Детектування амілоїдних фібрил лізоциму за допомогою триметинціанінових барвників: спектроскопічні дослідження та молекулярний докінг

  • Ольга Житняківська Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-2068-5823
  • Уляна Тарабара Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-7677-0779
  • Атанас Курутос Інститут органічної хімії та фітохімії Академії Наук Болгарії, Софія, Болгарія; Кафедра фармацевтичної та прикладної органічної хімії, Факультет хімії та фармації, Софійський університет імені Св. Климента Охридського, Софія, Болгарія https://orcid.org/0000-0002-6847-198X
  • Катерина Вус Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0003-4738-4016
  • Валерія Трусова Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-7087-071X
  • Галина Горбенко Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-0954-5053
Ключові слова: Триметинові ціанінові зонди, лізоцим, амілоїдні фібрили

Анотація

Завдяки своїм унікальним фотофізичним і фотохімічним властивостям, а також їх високій чутливості до бета-складчастих мотивів, ціанінові барвники широко застосовуються як молекулярні зонди для ідентифікації та характеризації амілоїдних фібрил in vitro та візуалізації амілоїдних включень in vivo. В даній роботі, за допомогою спектроскопічних методів та молекулярного докінгу досліджено амілоїдну специфічність та механізми взаємодії між триметинціаніновими барвниками та нативним (LzN) і фібрилярним (LzF) лізоцимом. Встановлено, що асоціація триметину з нефібрилярним і фібрилярним білком супроводжується зміною ступеня агрегації барвників. Дослідження молекулярного докінгу між триметиновими барвниками та лізоцимом у нативному та амілоїдному станах показують, що: i) триметини мають тенденцію утворювати найбільш стабільні комплекси з deep cleft of the native lysozyme; ii) зв’язування барвника з нефібрилярним білком регулюється гідрофобними взаємодіями, π-стекінгом між ароматичним або циклопентановим кільцем ціаніну та Trp у положенні 63 або 108 та водневими зв’язками між OH-групами триметинів і акцепторними атомами Asp 101 (AK3-7) і Gln 57 (AK3-8); iii) ціанінові барвники утворюють енергетично найбільш сприятливі комплекси з борозенкою Gly 2-Leu 4/Ser 8‑Trp 10 ядра фібрили лізоциму; iv) взаємодія ціаніни-LzF стабілізується гідрофобними контактами, π-стекінговою взаємодією та водневими зв’язками. Барвники АК3-7, АК3-5 та АК3-11 були обрані як найбільш перспективні амілоїдні зонди.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Посилання

P. Pronkin, A. Tatikolov, Molecules, 27(19), 6367 (2022). https://doi.org/10.3390/molecules27196367.

M. Bokan, G. Gellerman, L. Patsenker. Dyes Pigm., 171, 107703 (2019). https://doi.org/10.1016/j.dyepig.2019.107703.

M. Guo, P. Diao, Y.-J. Ren, F. Meng, H. Tian and S.-M. Cai, Sol. Energy Mater. Sol. Cells, 88, 33–35 (2005). https://doi.org/10.1016/j.solmat.2004.10.003.

C. Shi, J.B. Wu, D. Pan. J. Biomed. Opt. 21(5), 05901 (2022). https://doi.org/10.1117/1.JBO.21.5.050901.

G. D. Pelle, A. D. Lopez, M. S. Fiol, Int. J. Mol. Sci., 22(13), 6914, (2021). https://doi.org/10.3390/ijms22136914.

O. Cavuslar, and H. Unal, RSC Advances. 5, 22380-22389 (2015). https://doi.org/10.1039/C5RA00236B

H. L. Yang, S.Q. Fang, Y.W. Tang, et al., Eur. J. Med. Chem. 179, 736-73 (2019). http://dx.doi.org/10.1016/j.ejmech.2019.07.005.

X. Mu, F. Wu, R. Wang, Z. Huang, et al., Sens Actuators B. Chemical., 338, 29842, (2021). https://doi.org/10.1016/j.snb.2021.129842.

K.D. Volkova, V.B. Kovalska, O.A. Balanda, R.J. Vermeij, V. Subramaniam, Y.L. Slominskii, S.M. Yarmoluk, J. Biochem. Biophys. Methods, 70, 727–733, (2007). https://doi.org/10.1016/j.jbbm.2007.03.008.

V.B. Kovalska, M.Yu. Losytskyy, O.I. Tolmachev, et al., J. Fluoresc. 22, 1441–1448, (2012). https://doi.org/10.1007/s10895-012-1081-x.

J. Yan, J. Zhu, K. Zhou, et al., Chem. Commun. 53, 1441–1448, (2017). https://doi.org/10.1039/C7CC05056A.

T. Smidlehner, H. Bonnet, S. Chierici, I. Piantanida, Bioorg. Chem.,104, 104196, (2020). https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2020.104196.

R. Sabate, J. Estelrich, Biopolymers, 72(6), 455-463, (2003).https://doi.org/10.1002/bip.10485.

G.Q. Gao, A.W. Xu, RSC Adv., 3, 21092-21098, (2013). https://doi.org/10.1039/C3RA43259A.

O. Zhytniakivska, A. Kurutos, U. Tarabara, K. Vus, V. Trusova, G. Gorbenko, N. Gadjev. And T. Deligeorgiev, J. Mol. Liq. 311, 113287 (2020), https://doi.org/10.1016/j.molliq.2020.113287

S. Chernii, Y. Gerasymchuk, M. Losytskyy, D. Szymanski, et al., PLOS One, 16(1), e0243904. (2021). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0243904.

K. Vus, U. Tarabara, A. Kurutos, O Ryzhova, G. Gorbenko, et al., Mol Biosyst, 13(5), 1970-1980, (2017). https://doi.org/10.1039/c7mb00185a

H.L. Yang, S.Q. Fang, Y.W. Tang, et al. Eur. J. Med. Chem, 179, 736-743, (2019). https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2019.07.005.

K. Vus, M. Girych, V. Trusova, et al. J Mol Liq, 276, 541-552 (2019). https://doi.org/10.1016/j.molliq.2018.11.149.

M. Bacalum, B. Zorila, M. Radu, Anal. Biochem., 440, 123-129, (2013). https:// doi.org/10.1016/j.ab.2013.05.031.

S. Dallakyan, and A.J. Olson, Methods Mol. Biol. 1263, 243-250 (2015), https://doi.org/10.1007/978-1-4939-2269-7_19.

S. Salentin, S. Schreiber, V.Joachim Haupt, M.F. Adasme, and M. Schroeder, Nucleic Acids Res. 43, W443-W447 (2015), https://doi.org/10.1093/nar/gkv315.

P. Csizmadia, In: Proceedings of ECSOC-3, the third international electronic conference on synthetic organic chemistry, 367-369 (1999), https://doi.org/10.3390/ECSOC-3-01775

M.D. Hanwell, D.E. Curtis, D.C. Lonie, T. Vandermeersch, E. Zurek, and G.R. Hutchison, J. Cheminform. 4, 17 (2012), https://doi.org/10.1186/1758-2946-4-17.

V. Trusova, East Eur. J. Phys. 2, 51-58 (2015), https://doi.org/10.26565/2312-4334-2015-2-06.

P.L. Donabedian, M. Evanoff, F.A. Monge, D.G. Whitten, and E.Y. Chi, ACS Omega, 2, 3192-3200 (2017), https://doi.org/10.1021/acsomega.7b00231

Опубліковано
2022-12-06
Цитовано
Як цитувати
Житняківська, О., Тарабара, У., Курутос, А., Вус, К., Трусова, В., & Горбенко, Г. (2022). Детектування амілоїдних фібрил лізоциму за допомогою триметинціанінових барвників: спектроскопічні дослідження та молекулярний докінг. Східно-європейський фізичний журнал, (4), 213-221. https://doi.org/10.26565/2312-4334-2022-4-22

Найбільш популярні статті цього автора (авторів)

1 2 > >>