Молекулярний докінг монометинових ціанінових барвників з амілоїдними фібрилами лізоциму

  • Ольга Житняківська Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-2068-5823
  • Улляна Тарабара Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-7677-0779
  • Атанас Курутос Інститут органічної хімії та фітохімії Академії Наук Болгарії, Софія, Болгарія; Кафедра фармацевтичної та прикладної органічної хімії, Факультет хімії та фармації Софійський університет імені Св. Климента Охридського, Софія, Болгарія https://orcid.org/0000-0002-6847-198X
  • Катерина Вус Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0003-4738-4016
  • Валерія Трусова Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-7087-071X
  • Галина Горбенко Кафедра медичної фізики та біомедичних нанотехнологій, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна, Харків, Україна https://orcid.org/0000-0002-0954-5053
Ключові слова: монометинові ціанінові зонди, амілоїдні фібрили лізоциму, молекулярний докінг

Анотація

Агрегація білків у високовпорядковані супрамолекулярні агрегати є ознакою багатьох дегенеративних захворювань, включаючи неврологічні розлади (хвороби Паркінсона, Альцгеймера та Хантінгтона), діабет ІІ типу, системний амілоїдоз, енцефалопатію, тощо. Самий простий і ефективних метод детектування та характеризації амілоїдних фібрил in vitro та візуалізація амілоїдних включень in vivo базується на використанні зондів, чутливих до бета-складчастих мотивів. Для створення нових амілоїд-специфічних барвників і оптимізації уже існуючих сполук, важливо розуміти на молекулярному та атомному рівнях механізми їх взаємодії у центрах зв’язування. Серед особливо корисних методів, здатних забезпечити розуміння механізмів різних типів біомолекулярних взаємодій на атомному рівні, є метод молекулярного докінгу. У даній роботі метод молекулярного докінгу використовувався для дослідження взаємодії між монометиновими ціаніновими барвниками та амілоїдними фібрилами лізоциму, що були побудовані з K-пептиду лізоциму GILQINSRW (залишки 54–62 білка дикого типу). За допомогою програмного інтерфейсу AutoDOCK і профайлера білок-лігандної взаємодії PLIP встановлено: 1) монометини взаємодіють з поверхнею фібрили (з ароматичними залишками на вершині β-листа або з краями β-листа); ii) зв’язування барвників відбувається за рахунок гідрофобними взаємодій, сольових містків та водневими зв’язків між аліфатичними замісниками на атомі азоту бензотіазолової частини молекул барвника та амілоїдної фібрили лізоциму; iii) варіації в структурі ціанінів та в скручуванні амілоїду лізоциму не вплинули в значній мірі на спосіб взаємодію ціанінів.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Посилання

J. Fan, A. Fu, and L. Zhang, Quant. Biol. 7(2), 83-89 (2019). https://doi.org/10.1007/s40484-019-0172-y

T. Lengauer, and M. Rarey, Cur. Opin. Struct. Biol. 6, 402-406 (1996). https://doi.org/10.1016/S0959-440X(96)80061-3

N.S. Pagadala, K. Syed, and J. Tuszynski, Biophys Rev. 9, 91-102 (2017), https://doi.org/10.1007/s12551-016-0247-1

P.H.M. Torres, A.S.R. Sodero, P. Jofily, F.P. Silva-Jr, Int. J. Mol. Sci. 20, 4574 (2019). https://doi.org/10.3390/ijms20184574

L.G. Ferreira, R.N. Dos Santos, G. Oliva, and A.D. Andricopulo, Molecules, 20(7), 13384-13421 (2015). https://doi.org/10.3390/molecules200713384

W. Yu, and A.D. MacKerell Jr. Antibiotics, 1520, 85-106 (2016). https://doi.org /10.1007/978-1-4939-6634-9_5

J. Ritu, D. Mehak, K. Alka, and C. Anil K., Cur. Bioinform. 15, 270-278 (2020). https://doi.org/10.2174/1574893615666191219094216

J.A. Pradeepkiran, and P.H. Reddy, Cells, 8, 260 (2019). https://doi.org/10.3390/cells8030260

R. Yu, L. Chen, R. Lan, R. Shen, and P. Li, Int. J. Antimicrob. Agents, 56, 106012 (2020). https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2020.106012

S. Das, S. Sarmah, S. Lyndem, and A.S. Roy, J. Biomol. Struct. Dyn. 39, 3347-3357 (2021). https://doi.org/10.1080/07391102.2020.1763201

D.R. Langley, A. W. Walsh, C. J. Baldick, et al, J, Virol. 81, 3992-4001 (2007). https://doi.org/10.1128/JVI.02395-06

W.-G. Gu, X. Zhang, and J.-F. Yuan. The AAPS J. 16, 674-680 (2014). https://doi.org/10.1208/s12248-014-9604-9

I. Ali, M.N. Lone, and H.Y. Alboul-Enein. Med Chem Comm. 9, 1742-1773 (2017). https://doi.org/10.1039/C7MD00067G

T. Al-Warhi, A. Sabt, E.B. Elkaeed, and W.M. Eldehna. Bioorg. Chem. https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2020.104163

A. Fisher, B.G. Freedman, D.R. Bevan, and R.S. Senger. Comput. Struct. Biotechnol. J. 11, 91-99 (2014). https://doi.org/10.1016/j.csbj.2014.08.010

H.Liu, M. Tu, S. Cheng, H. Chen, Z. Wang, and M. Du. Food Funct. 10, 886-896 (2019). https://doi.org/10.1039/C8FO02235F

A. Chakraborty, A.K. Panda, R. Ghosh, and A. Biswas, Arch. Biochem. Biophys. 665, 107-113 (2019). https://doi.org/10.1016/j.abb.2019.03.001

A. Mukherjee, and B. Singh, J. Luminesc. 190, 319-327 (2017). https://doi.org/10.1016/j.jlumin.2017.05.068

T. Pantsar, and A. Poso, Molecules. 23, 1899 (2018). https://doi.org/10.3390/molecules23081899

R. Wang, L. Lai, and S. Wang, J. Comput. Aided Mol 16, 11-26 (2002). https://doi.org/10.1023/A:1016357811882

S. Ghasemzadeh, and G.H. Riazi, Int. J. Biol. Macromol. 154, 1505-1516 (2020). https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2019.11.032

Z. Chen, G. Krause, and B. Reif, J. Mol. Biol. 354, 760-776 (2005). https://doi.org/10.1016/j.jmb.2005.09.055

N.H. Mudliar, and P.K. Singh, Chem. Commun. 55, 3907-3910 (2019). https://doi.org/10.1039/C9CC01262A

A.K. Mora, P.K. Singh, B.S. Patro, and S. Nath, Chem. Commun. 52, 12163-12166 (2016). https://doi.org/10.1039/C6CC05600H

O. Zhytniakivska, A. Kurutos, U. Tarabara, et al. J. Mol. Liq. 311, 113287 (2020). https://doi.org/10.1016/j.molliq.2020.113287

G.Q. Gao, and A.W. Xu, RSC Adv. 3, 21092-21098 (2013). https://doi.org/10.1039/C3RA43259A

R. Sabate, and J. Estelrich, Biopolymers, 72, 455-463 (2003). https://doi.org/10.1002/bip.10485

H.L. Yang, S.Q. Fang, Y.W. Tang, et al. Eur. J. Med. Chem. 179, 736-743 (2019). https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2019.07.005

X. Wang, H.N. Chan, N. Desbois, C.P. Gros, et al. ACS. Appl. Mater. Interfaces, 13, 18525-18532 (2021). https://doi.org/10.1021/acsami.1c01585

T. Smidlehner, H. Bonnet, S. Chierici, and I. Piantanida, Bioorg. Chem. 104196 (2020). https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2020.104196

K. Vus, M. Girych, V. Trusova, et al. J Mol Liq, 276, 541-552 (2019). https://doi.org/10.1016/j.molliq.2018.11.149

V. Kovalska, M. Losytskyy, V. Chernii, K. Volkova, et al. Bioorg. Med. Chem. 20, 330-334. (2012). https://doi.org/10.1016/j.bmc.2011.10.083

S. Chernii, Y. Gerasymchuk, M. Losytskyy, et al. PLOS ONE, 16, e0243904. (2021). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0243904

V. Trusova, East Eur. J. Phys. 2, 51-58 (2015). https://doi.org/10.26565/2312-4334-2015-2-06

D. Schneidman-Duhovny, Y. Inbar, R. Nussimov, and H. Wolfson, Nucl. Acids Res. 33, W363-W367 (2006). https://doi.org/10.1093/nar/gki481

N. Andrusier, R. Nussimov, and H. Wolfson. Proteins, 69, 139-159 (2007). https://doi.org/10.1002/prot.21495

M.R. Smaoui, F. Poitevin, M. Delarue, et al. Biophys J. 104, 139-159 (2007). https://doi.org/10.1016/j.bpj.2012.12.037

S. Dallakyan, and A.J. Olson, Methods Mol. Biol. 1263, 243-250 (2015). https://doi.org/10.1007/978-1-4939-2269-7_19

P. Csizmadia, In: Proceedings Of ECSOC-3, The Third International Electronic Conference on Synthetic Organic Chemistry, 367-369 (1999). https://doi.org/10.3390/ECSOC-3-01775

M.D. Hanwell, D.E. Curtis, D.C. Lonie, T. Vandermeersch, E. Zurek, and G.R. Hutchison, J. Cheminform. 4, 17 (2012). https://doi.org/10.1186/1758-2946-4-17

E.F. Pettersen, T.D. Goddard, C.C. Huang, G.S. Couch, D.M. Greenblatt, E.C. Meng, and T.E. Ferrin. J. Comput. Chem. 25, 1605-1612 (2004). https://doi.org/10.1002/jcc.20084

S. Salentin, S. Schreiber, V. Joachim Haupt, M.F. Adasme, and M. Schroeder, Nucleic Acids Res. 43 W443-W447 (2015). https://doi.org/10.1093/nar/gkv315

M. Biancalana, and S. Kode, Biochem. Biophys. Acta, 1804, 1405-1412 (2010). https://doi.org/10.1016/j.bbapap.2010.04.001

E.F. Marondedze, K.K. Govender, and P.P. Govender, Biophys Chem. 256, 106281 (2020). https://doi.org/10.1016/j.bpc.2019.106281

M. Sunde, L. Serpell, M. Bartlam, et al. J. Mol. Biol. 273, 729-739 (1997). https://doi.org/10.1006/jmbi.1997.1348

O. Zhytniakivska, A. Kurutos, M. Shchuka, et al. Chem Phys Lett, 785, 139127 (2021). https://doi.org/10.1039/D1CP01359A

A. Sulatskaya, N. Rodina, M. Sulatsky, et al. Int. J. Mol. Sci. 19, 2486 (2018). https://doi.org/10.3390/ijms19092486

Опубліковано
2022-09-02
Цитовано
Як цитувати
Житняківська, О., Тарабара, У., Курутос, А., Вус, К., Трусова, В., & Горбенко, Г. (2022). Молекулярний докінг монометинових ціанінових барвників з амілоїдними фібрилами лізоциму. Східно-європейський фізичний журнал, (3), 142-148. https://doi.org/10.26565/2312-4334-2022-3-18

Найбільш популярні статті цього автора (авторів)

1 2 > >>