Аналіз in silico сайтів зв’язування потенційних інгібіторів комплексу фуринової протеази та спайк білка SARS-COV-2

  • Н. В. Хміль Інститут радіофізики та електроніки ім. О. Я. Усикова НАН України, вул. Ак. Проскури, 12, Харків, 61085, Україна https://orcid.org/0000-0001-7916-5921
  • А. В. Шестопалова Інститут радіофізики та електроніки ім. О. Я. Усикова НАН України, вул. Ак. Проскури, 12, Харків, 61085, Україна https://orcid.org/0000-0001-7613-7212
  • В. Г. Колесніков 2Інститут радіофізики та електроніки ім. О. Я. Усикова НАН України, вул. Ак. Проскури, 12, Харків, 61085, Україна https://orcid.org/0000-0001-7822-4774
Ключові слова: спайк білок SARS-CoV-2, фуринова протеаза, противірусні препарати, молекулярний докінг, здоров'я людини

Анотація

Актуальність. COVID-19 – це інфекційне захворювання, спричинене коронавірусом важкого гострого респіраторного синдрому (SARS-CoV-2). Зусилля у боротьбі з вірусом включають розробку та дослідження вакцин, моноклональних антитіл і специфічних противірусних препаратів, спрямованих на важливі мішені у життєвому циклі вірусу.

Мета роботи. Метою дослідження є аналіз сайтів зв’язування фуринової протеази зі спайк білком SARS-CoV-2 (S білок) у різних конформаціях та оцінка спорідненості зв’язування неспецифічних противірусних препаратів і макроциклічного пептидоміметичного інгібітора 8 (PI8) із комплексами S-білок–фуринова протеаза методом молекулярного докінгу.

Матеріали та методи. Тривимірні структури S білка (PDB IDs: 6VYB, 6VXX, 7VHJ) з білкової бази даних (www.rcsb.org) були доковані до фуринової протеази (PDB ID: 5JXG) за допомогою сервера ClusPro 2.0. Неспецифічні противірусні препарати, такі як ремдесивір, хлорохін, фавіпіравір, нелфінавір, а також PI8, були доковані до комплексів 6VYB-5JXG, 6VXX-5JXG і 7VHJ-5JXG за допомогою AutoDock Vina. Ліганди були енергетично мінімізовані за допомогою універсального силового поля (UFF) і конвертовані у формат PDBQT за допомогою OpenBabel. Оптимізація білків здійснювалася з використанням інструментів AutoDock. Результати докінгу були візуалізовані у програмі Discovery Studio 2024.

Результати. Спорідненість зв’язування досліджених лігандів із комплексами S-білок–фуринова протеаза підтверджена результатами молекулярного докінгу. PI8, нелфінавір і ремдесивір показали високу спорідненість зв’язування зі структурою 7VHJ-5JXG через наявність амінокислотних залишків у місці розщеплення фурину. Найкращі результати молекулярного докінгу для PI8 з комплексами 6VYB-5JXG, 6VXX-5JXG і 7VHJ-5JXG становлять -9.7 ккал/моль, -9.5 ккал/моль і -9.9 ккал/моль відповідно. Взаємодія між комплексами S-білок–фуринова протеаза і PI8 відбувається через специфічні амінокислотні залишки, розташовані головним чином у каталітичному центрі фурину та петлі реактивного сайту PI8. Дослідження показали, що ремдесивір безпосередньо впливає на сайт розщеплення фурину S білка (у комплексі 7VHJ-5JXG), утворюючи  енергетично сприятливі взаємодії завдяки водневим зв’язкам і гідрофобним контактам із високою спорідненістю зв’язування (енергетичний показник зв’язування становив -9.1 ккал/моль). Енергетично сприятливі взаємодії комплексів 6VYB-5JXG, 6VXX-5JXG і 7VHJ-5JXG з нелфінавіром також підтверджуються їх низькими енергетичними показниками, які становлять -8.2 ккал/моль, -8.9 ккал/моль і -9.3 ккал/моль відповідно.

Висновки. Згідно з результатами молекулярного докінгу, PI8, нелфінавір і ремдесивір демонструють енергетично сприятливі взаємодії з досліджуваними комплексами та мають потенціал для використання як перспективні інгібітори, спрямовані на комплекси SARS-CoV-2 S-білка з фуриновою протеазою.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Посилання

WHO. 2020. Coronavirus disease 2019 (COVID-19) weekly epidemiological updates. Available from: https://www.who.int/emergencies/diseases/novel-coronavirus-2019/situation-reports

Sanche S, Lin YT, Xu C, Romero-Severson E, Hengartner N, Ke R. High contagiousness and rapid spread of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2. Emerg Infect Dis. 2020;26(7):1470–77. https://doi.org/10.3201/eid2607.200282

Sanders JM, Monogue ML, Jodlowski TZ, Cutrell JB. Pharmacologic treatments for coronavirus disease 2019 (COVID-19): A Review. JAMA. 2020;323(18):1824–36. https://doi.org/10.1001/jama.2020.6019

Khmil NV, Kolesnikov VG, Boiechko-Nemovcha AO. Binding characteristics of systemic glucocorticoids to the SARS-CoV-2 spike glycoprotein: in silico evaluation. Low Temp Phys. 2025;51:96–103 https://doi.org/10.1063/10.0034652

Zhang L, Lin D, Sun X, Curth U, Drosten C, Sauerhering L, et al. Crystal structure of SARS-CoV-2 main protease provides a basis for design of improved α-ketoamide inhibitors. Science. 2020;368(6489):409-12. https://doi.org/10.1126/science.abb3405

Khmil NV, Shestopalova AV, Kolesnikov VG, Boiechko-Nemovcha AO. Identification of potential corticosteroid binding sites on the SARS CoV-2 main protease Mpro- in silico docking study. Biophysical Bulletin. 2024;51:53–63. https://doi.org/10.26565/2075-3810-2024-51-04

Huang Y, Yang C, Xu XF, Xu W, Liu SW. Structural and functional properties of SARS-CoV-2 spike protein: potential antivirus drug development for COVID-19. Acta Pharmacol Sin. 2020;41(9):1141–49. https://doi.org/10.1038/s41401-020-0485-4

Zhang J, Xiao T, Cai Y, Chen B. Structure of SARS-CoV-2 spike protein. Curr Opin Virol. 2021;50:173–82. https://doi.org/10.1016/j.coviro.2021.08.010

Hulswit RJ, de Haan CA, Bosch BJ. Coronavirus spike protein and tropism changes. Adv Virus Res. 2016;96:29–57. https://doi.org/10.1016/bs.aivir.2016.08.004

Cai Y, Zhang J, Xiao T, Peng H, Sterling SM, Walsh RM, et al. Distinct conformational states of SARS-CoV-2 spike protein. Science. 2020;369(6511):1586–92. https://doi.org/10.1126/science.abd4251

Gur M, Taka E, Yilmaz SZ, Kilinc C, Aktas U, Golcuk M. Conformational transition of SARS-CoV-2 spike glycoprotein between its closed and open states. J Chem Phys. 2020;153(7):075101. https://doi.org/10.1063/5.0011141

Hoffmann M, Kleine-Weber H, Pöhlmann S. A Multibasic cleavage site in the spike protein of SARS-CoV-2 is essential for Infection of human lung cells. Mol Cell. 2020;78(4):779-84.e5. https://doi.org/10.1016/j.molcel.2020.04.022

Strobelt R, Adler J, Shaul Y. The Transmembrane protease serine 2 (TMPRSS2) non-protease domains regulating severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) spike-mediated virus entry. Viruses. 2023;15(10):2124. https://doi.org/10.3390/v15102124

Marcink TC, Kicmal T, Armbruster E, Zhang Z, Zipursky G, Golub KL, et al. Intermediates in SARS-CoV-2 spike-mediated cell entry. Sci Adv. 2022;8(33):eabo3153. https://doi.org/10.1126/sciadv.abo3153

Peacock TP, Goldhill DH, Zhou J, Baillon L, Frise R, Swann OC, et al. The furin cleavage site in the SARS-CoV-2 spike protein is required for transmission in ferrets. Nat Microbiol. 2021;6(7):899–909. https://doi.org/10.1038/s41564-021-00908-w

Coutard B, Valle C, de Lamballerie X, Canard B, Seidah NG, Decroly E. The spike glycoprotein of the new coronavirus 2019-nCoV contains a furin-like cleavage site absent in CoV of the same clade. Antiviral Res. 2020;176:104742. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2020.104742

Holmes EC, Goldstein SA, Rasmussen AL, Robertson DL, Crits-Christoph A, Wertheim JO, et al. The origins of SARS-CoV-2: A critical review. Cell. 2021;184(19):4848–56. https://doi.org/10.1016/j.cell.2021.08.017

Cheng YW, Chao TL, Li CL, Chiu MF, Kao HC, Wang SH, et al. Furin inhibitors block SARS-CoV-2 spike protein cleavage to suppress virus production and cytopathic effects. Cell Rep. 2020;33(2):108254. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2020.108254

Brown AJ, Won JJ, Graham RL, Dinnon KH, Sims AC, Feng JY, et al. Broad spectrum antiviral remdesivir inhibits human endemic and zoonotic deltacoronaviruses with a highly divergent RNA dependent RNA polymerase. Antiviral Res. 2019;169:104541. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2019.104541

Nguyen TH, Guedj J, Anglaret X, Laouénan C, Madelain V, Taburet AM, et al. Favipiravir pharmacokinetics in Ebola-Infected patients of the JIKI trial reveals concentrations lower than targeted. PLoS Negl Trop Dis. 2017;11(2):e0005389. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0005389

Garriga C, Pérez-Elías MJ, Delgado R, Ruiz L, Nájera R, Pumarola T, et al. Mutational patterns and correlated amino acid substitutions in the HIV-1 protease after virological failure to nelfinavir- and lopinavir/ritonavir-based treatments. J Med Virol. 2007;79(11):1617–28. https://doi.org/10.1002/jmv.20986

Agostini ML, Andres EL, Sims AC, Graham RL, Sheahan TP, Lu X, et al. Coronavirus susceptibility to the antiviral remdesivir (GS-5734) is mediated by the viral polymerase and the proofreading exoribonuclease. mBio. 2018;9(2):e00221-18. https://doi.org/10.1128/mBio.00221-18

Grein J, Ohmagari N, Shin D, Diaz G, Asperges E, Castagna A, et al. Compassionate use of remdesivir for patients with severe Covid-19. N Engl J Med. 2020;382(24):2327–36. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2007016

Driouich JS, Cochin M, Lingas G, Moureau G, Touret F, Petit PR, et al. Favipiravir antiviral efficacy against SARS-CoV-2 in a hamster model. Nat Commun. 2021;12(1):1735. https://doi.org/10.1038/s41467-021-21992-w

Jia Y, Tian W, Li Y, Teng Y, Liu X, Li Z, et al. Chloroquine: Rapidly withdrawing from first-line treatment of COVID-19. Heliyon. 2024;10(17):e37098. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2024.e37098

Søndergaard CR, Olsson MH, Rostkowski M, Jensen JH. Improved treatment of ligands and coupling effects in empirical calculation and rationalization of pKa values. J Chem Theory Comput. 2011;7(7):2284–95. https://doi.org/10.1021/ct200133y

Trott O, Olson AJ. AutoDock Vina: improving the speed and accuracy of docking with a new scoring function, efficient optimization, and multithreading. J Comput Chem. 2010;31(2):455–61. http://doi.org/10.1002/jcc.21334

O'Boyle NM, Banck M, James CA, Morley C, Vandermeersch T, Hutchison GR. Open Babel: An open chemical toolbox. J Cheminform. 2011;3:33. https://doi.org/10.1186/1758-2946-3-33

Dahms SO, Jiao GS, Than ME. Structural studies revealed active site distortions of human furin by a small molecule inhibitor. ACS Chem Biol. 2017;12(5):1211–16. https://doi.org/10.1021/acschembio.6b01110

Kozakov D, Brenke R, Comeau SR, Vajda S. PIPER: an FFT-based protein docking program with pairwise potentials. Proteins. 2006;65(2):392–406. https://doi.org/10.1002/prot.21117

Bashir A, Li S, Ye Y, Zheng Q, Knanghat R, Bashir F, et al. SARS-CoV-2 S protein harbors furin cleavage site located in a short loop between antiparallel β-strand. Int J Biol Macromol. 2024;281(Pt 1):136020. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.136020

Vankadari N. Structure of furin protease binding to SARS-CoV-2 spike glycoprotein and implications for potential targets and virulence. J Phys Chem Lett. 2020;11(16):6655–63. https://doi.org/10.1021/acs.jpclett.0c01698

Bollavaram K, Leeman TH, Lee MW, Kulkarni A, Upshaw SG, Yang J, et al. Multiple sites on SARS-CoV-2 spike protein are susceptible to proteolysis by cathepsins B, K, L, S, and V. Protein Sci. 2021;30(6):1131–43. https://doi.org/10.1002/pro.4073

Bosch BJ, Bartelink W, Rottier PJ. Cathepsin L functionally cleaves the severe acute respiratory syndrome coronavirus class I fusion protein upstream of rather than adjacent to the fusion peptide. J Virol. 2008;82(17):8887–90. https://doi.org/10.1128/JVI.00415-08

Van Lam van T, Ivanova T, Hardes K, Heindl MR, Morty RE, Böttcher-Friebertshäuser E, et al. Design, synthesis, and characterization of macrocyclic inhibitors of the proprotein convertase furin. ChemMedChem. 2019;14(6):673–85. https://doi.org/10.1002/cmdc.201800807

Gordon CJ, Tchesnokov EP, Woolner E, Perry JK, Feng JY, Porter DP, et al. Remdesivir is a direct-acting antiviral that inhibits RNA-dependent RNA polymerase from severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 with high potency. J Biol Chem. 2020;295(20):6785–97. https://doi.org/10.1074/jbc.RA120.013679

Nguyen HL, Thai NQ, Truong DT, Li MS. Remdesivir strongly binds to both RNA-dependent RNA polymerase and main protease of SARS-CoV-2: evidence from molecular simulations. J Phys Chem B. 2020;124(50):11337–48. https://doi.org/10.1021/acs.jpcb.0c07312

Eweas AF, Alhossary AA, Abdel-Moneim AS. Molecular docking reveals ivermectin and remdesivir as potential repurposed drugs against SARS-CoV-2. Front Microbiol. 2021;11:592908. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.592908

Sukeishi A, Itohara K, Yonezawa A, Sato Y, Matsumura K, Katada Y, et al. Population pharmacokinetic modeling of GS-441524, the active metabolite of remdesivir, in Japanese COVID-19 patients with renal dysfunction. CPT: Pharmacomet Syst Pharmacol. 2022;11(1):94–103. https://doi.org/10.1002/psp4.12736

Thomas G. Furin at the cutting edge: from protein traffic to embryogenesis and disease. Mol Cell biol. 2002;3(10):753–66. https://doi.org/10.1038/nrm934

Jorge A, Ung C, Young LH, Melles RB, Choi HK. Hydroxychloroquine retinopathy - implications of research advances for rheumatology care. Nat Rev Rheumatol. 2018;14(12):693–703. https://doi.org/10.1038/s41584-018-0111-8

Badraoui R, Adnan M, Bardakci F, Alreshidi MM. Chloroquine and hydroxychloroquine interact differently with ACE2 domains reported to bind with the coronavirus spike protein: mediation by ACE2 polymorphism. Molecules. 2021;26(3):673. https://doi.org/10.3390/molecules26030673

El Khatabi K, Aanouz I, Alaqarbeh M, Ajana MA, Lakhlifi T, Bouachrine M. Molecular docking, molecular dynamics simulation, and ADMET analysis of levamisole derivatives against the SARS-CoV-2 main protease (MPro). Bioimpacts. 2022;12(2):107–13. https://doi.org/10.34172/bi.2021.22143

Shannon A, Selisko B, Le NT, Huchting J, Touret F, Piorkowski G, et al. Rapid incorporation of favipiravir by the fast and permissive viral RNA polymerase complex results in SARS-CoV-2 lethal mutagenesis. Nat Commun. 2020;11(1):4682. https://doi.org/10.1038/s41467-020-18463-z

Yadav P, Rana M, Chowdhury P. DFT and MD simulation investigation of favipiravir as an emerging antiviral option against viral protease (3CLpro) of SARS-CoV-2. J Mol Struct. 2021;1246:131253. https://doi.org/10.1016/j.molstruc.2021.131253

Опубліковано
2025-12-18
Цитовано
Як цитувати
Хміль, Н. В., Шестопалова, А. В., & Колесніков, В. Г. (2025). Аналіз in silico сайтів зв’язування потенційних інгібіторів комплексу фуринової протеази та спайк білка SARS-COV-2. Біофізичний вісник, (54), 9-26. https://doi.org/10.26565/2075-3810-2025-54-01
Розділ
Молекулярна біофізика