Флуориметричне дослідження взаємодії координаціонних комплексів европію та ДНК

  • O. K. Kutsenko Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна
  • V. M. Trusova Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна
  • G. P. Gorbenko Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна
  • L. A. Limanskaya Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна
  • T. Deligeorgiev Кафедра прикладной органической химии, Факультет Химии, Университет Софии
  • A. Vasilev Кафедра прикладной органической химии, Факультет Химии, Университет Софии
  • S. Kaloyanova Кафедра прикладной органической химии, Факультет Химии, Университет Софии
  • N. Lesev Кафедра прикладной органической химии, Факультет Химии, Университет Софии
Ключові слова: ДНК, координаційні комплекси європію, акридиновий оранжевий

Анотація

Координаційні комплекси європію широко використовуються в різноманітних областях, включаючи, лазерну техніку, флуоресцентний та біомедичний аналіз. Крім того, вони мають антипухлинні властивості. Eu(III) трис-β-дікетонато комплекси (ЕС) – новітні препарати, які мають високу протиракову активність. Незважаючи на численні дослідження, молекулярні аспекти їх біологічної дії до цього часу ще не охарактеризовані. З’ясування молекулярних механізмів взаємодії ЕС з ДНК може відкрити нові шляхи для створення ефективних лікарських препаратів. В даній роботі взаємодію ЕС з ДНК досліджували за допомогою флуоресцентного зонду акридинового оранжевого (АО). Додавання препаратів до системи АО, зв’язанного з ДНК, по-різному вплинуло на спектральні властивості зонду – найбільший ефект проявили ЕС4 та ЕС6. У зв’язуванні АО з ДНК важливу роль відіграє механізм інтеркаляції. ЕС – це великі планарні структури, для яких інтеркаляція – найбільш вірогідний спосіб зв’язування з нуклеїновими кислотами. Отже, можна зробити висновок, що АО та ЕС конкурують за місця зв’язування на ДНК, причому найбільшу спорідненість має ЕС6.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Біографії авторів

O. K. Kutsenko, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна

пл. Свободи, 4, Харків, 61077

V. M. Trusova, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна

пл. Свободи, 4, Харків, 61077

G. P. Gorbenko, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна

пл. Свободи, 4, Харків, 61077

L. A. Limanskaya, Харківський національний університет імені В.Н. Каразіна

пл. Свободи, 4, Харків, 61077

T. Deligeorgiev, Кафедра прикладной органической химии, Факультет Химии, Университет Софии

Болгарія

A. Vasilev, Кафедра прикладной органической химии, Факультет Химии, Университет Софии

Болгарія

S. Kaloyanova, Кафедра прикладной органической химии, Факультет Химии, Университет Софии

Болгарія

N. Lesev, Кафедра прикладной органической химии, Факультет Химии, Университет Софии

Болгарія

Посилання

1. Cumminsa C.M. et al. Application of europium(III) chelate-dyed nanoparticle labels in a competitive atrazine fluoroimmunoassay on an ITO waveguide // Biosens. Bioelectron. – 2006. – V. 21. – P. 1077-1085.

2. Lis S. et al. Spectroscopic studies of Ln(III) complexes with polyoxometalates in solids, and aqueous and non-aqueous solutions // Int. J. Photoenergy. – 2003. – V. 5. – P. 233-238.

3. Kostova I. et al. Synthesis, characterization, and cytotoxic activity of new Lanthanum(III) complexes of bis- coumarins // Bioorg. Chem. App. – 2006. – P. 1-9.

4. Momekov G. et al. Evaluating of the cytotoxic and pro-apoptotic activities of Eu(III) complexes with appended DNA intercalators in a panel of human malignant cell lines // Med. Chem. – 2006. – V. 2. – P. 439-445.

5. Chaires J.B. Drug-DNA interactions // Curr. Opin. Struct. Biol. – 1998. – V. 8. – P. 314-320.

6. Frenster J. H. Electron microscopic localization of acridine orange binding to DNA within human leukemic bone marrow cells // Cancer Res. – 1971. – V. 31. – P. 1128-1133.

7. Barker G.R., Hardman N. The effects of acridine orange on deoxyribonucleic acid in Escherichia coli // Biochem. J. – 1978. – V. 171. – P. 567-573.

8. Tomita G. Fluorescence-excitation spectra of acridine orange-DNA and –RNA systems // Biophysic. – 1967. – V. 4. – P. 23-29.

9. Lakowicz J.R. Principles of fluorescent spectroscopy, Springer: Singapore, 2006, 954 p.

10. Dearing A., Weiner P., Kollman P.A. Molecular mechanical studies of proflavine and acridine orange intercalation // Nucleic Acids Res. – 1981. – V. 9. – N. 6. – P. 1483-1497.

11. Nafisi S., Saboury A.A., Keramat N., Neault J.-F., Tajmir-Riahi H.-A. Stability and structural features of DNA intercalation with ethidium bromide, acridine orange and methylene blue // J. Mol. Struct. – 2007. – V. 827. – P. 35-43.

12. Kure N., Sano T., Harada S., Yasunaga T. Kinetics of the interaction between DNA and acridine orange // Bull. Chem. Soc. Jpn. – 1988. – V. 61. – P. 643-653.

13. Motoda Y., Kubota Y. Delayed excimer fluorescence of acridine orange bound to DNA // Bull. Chem. Soc. Jpn. – 1979. – V. 52. – P. 693-696.

14. Kapuscinski J., Darzynkiewicz Z. Interactions of acridine orange with double stranded nucleic acids. Spectral and affinity studies // J. Biomol. Struct. Dyn. – 1987. – V. 5. – N. 1. – P. 127-43.

15. McGhee J., von Hippel P. Theoretical aspects of DNA-protein interactions: cooperative and non-cooperative binding of large ligands to a one-dimensional homogeneous lattice // J. Mol. Biol. – 1974. – V. 86. – P. 469- 489.
Опубліковано
2009-06-03
Цитовано
Як цитувати
Kutsenko, O. K., Trusova, V. M., Gorbenko, G. P., Limanskaya, L. A., Deligeorgiev, T., Vasilev, A., Kaloyanova, S., & Lesev, N. (2009). Флуориметричне дослідження взаємодії координаціонних комплексів европію та ДНК. Біофізичний вісник, 2(23), 40-45. вилучено із https://periodicals.karazin.ua/biophysvisnyk/article/view/4362
Розділ
Молекулярна біофізика