Стресова відповідь клітин на комбіновану дію іонізуючого, неіонізуючого випромінювання та магнітного поля: огляд на прикладі клітин букального епітелію людини
Анотація
Актуальність. Вплив малих доз іонізуючого випромінювання (ІВ) як такого та в поєднанні з іншими шкідливими фізичними факторами, такими як надвисокочастотні (НВЧ) мікрохвилі та магнітні поля (МП), в даний час є об'єктом численних досліджень. Проте результати цих досліджень все ще не мають однозначних висновків.
Мета роботи. Представлено огляд та аналіз раніше проведених серій експериментів у порівнянні з суміжними цільовими роботами для покращення розуміння ролі малих доз іонізуючого, неіонізуючого випромінювання та магнітного поля у розвитку ефектів клітинного стресу.
Результати. Наднизькі дози як самого ІВ, так і НВЧ і МП проявляли тригерні ефекти, які включають варіабельність модифікації ефекту ІВ. На прикладі ультраширокосмугового мікрохвильового опромінення показано значущість впливу навіть надмалих доз неіонізуючого випромінювання. Комбінований вплив гамма-випромінювання з НВЧ-мікрохвилями та МП на стан хроматину призвів до зменшення вмісту гранул гетерохроматину (ВГГ), але вплинув на зростання проникності клітинної мембрани (ПКМ) більше, ніж саме ІВ. Виявлено пригнічення активності мітохондрій та зниження Ca2+ в цитоплазмі при дії як ІВ, так і НВЧ-мікрохвиль та їх комбінацій. МП дещо підвищувало мембранний потенціал мітохондрій та не показало значних змін у перерозподілі Ca2+ до ядра при застосуванні разом з ІВ. При дії нейтронного випромінювання виявлено максимум показника ВГГ та проникності клітинної мембрани при дозі 36,5 мЗв. Подальше збільшення дози повертало стан хроматину та клітинної мембрани до контрольного рівня.
Висновки. На прикладі ВГГ показано невиразний ефект надмалих доз ІВ із модифікуючою здатністю НВЧ-мікрохвиль та МП. Ефекти високих доз гамма-випромінювання також були модифіковані як НВЧ-мікрохвилями, так і МП за показниками ВГГ (зменшення), ПКМ (збільшення), мітохондріальної активності (зменшення) і Ca2+-перерозподілу між ядром та цитоплазмою. Опромінення швидкими нейтронами в діапазоні низьких і середніх доз призводило до розвитку ознак клітинного стресу (підвищення ВГГ та ПКМ), які згладжувалися при збільшенні дози.
Завантаження
Посилання
Rodrigues FM, Tavella RA, Lopes C, Mortola AS, Peraza GG, Garcia EM. Genotoxic risk in health-care professionals occupationally exposed to low doses of ionizing radiation. Toxicol Ind Health. 2020;36(5):356–70. https://doi.org/10.1177/0748233720932081
Presman A. Electromagnetic Fields and Life. New York: Springer Science & Business Media; 2013. 336 p. https://doi.org/10.1007/978-1-4757-0635-2
Shaukat F, Qamar K, Butt SA. Effects of Mobile Phone Induced Electromagnetic Field on Height of Follicular Cells in Thyroid Gland of Mice. J Rawalpindi Med Coll. 2011;15(1):27–9.
Hintzsche H, Stopper H. Micronucleus frequency in buccal mucosa cells of mobile phone users. Toxicol Lett. 2010 Mar;193(1):124–30. https://doi.org/10.1016/j.toxlet.2009.12.016
Cao Y, Zhang W, Lu MX, Xu Q, Meng QQ, Nie JH, Tong J. 900-MHz Microwave Radiation Enhances Ray Adverse Effects on SHG44 Cells. J Toxicol Environ Health A. 2009;72(11–12):727–32. https://doi.org/10.1080/15287390902841466
Eltiti S, Wallace D, Ridgewell A, Zougkou K, Russo R, Sepulveda F, et al. Does Short-Term Exposure to Mobile Phone Base Station Signals Increase Symptoms in Individuals Who Report Sensitivity to Electromagnetic Fields? A Double-Blind Randomized Provocation Study. Environ Health Perspect. 2007;115(11):1603–8. https://doi.org/10.1289/ehp.10286
Dasdag S, Akdag MZ, Meric F, Uzunlar AK, Celik MS, Gun R. Effect of Extremely Low Frequency Magnetic Field and Mobile Phone Exposure on Nasal Mucosa and Nose Skin. Biotechnol Biotechnol Equip. 2011;25(1):2273–8. https://doi.org/10.5504/BBEQ.2011.0017
Presman AS. The action of microwaves on living organisms and biological structures. Sov Phys Usp. 1965;8(3):463–88. https://doi.org/10.1070/PU1965v008n03ABEH003056
Tanaka Y, Furuta M. Biological effects of low-dose γ-ray irradiation on chromosomes and DNA of Drosophila melanogaster. J Radiat Res. 2020;62(1):1–11. https://doi.org/10.1093/jrr/rraa108
Wakeford R, Tawn EJ. The meaning of low dose and low dose-rate. J Radiol Prot. 2010;30(1):1–3. https://doi.org/10.1088/0952-4746/30/1/e02
United Nations. Biological Mechanisms of Radiation Actions at Low Doses. New York: UNSCEAR; 2012. 45 p.
Lee MJ, Lee MY, Choe JY, Choi SH, Kim HJ. Ultra-low-dose radiation treatment for early-stage ocular adnexal MALT lymphoma. Eur J Ophthalmol. 2021;32(5):3092–6. https://doi.org/10.1177/11206721211035622
Ardelean I, Toedosiu G, Ştefanescu M, Moisescu C, Ardelean A-V, Constantin M, et al. The stimulating effects of non-lethal γ-radiation doses on prokaryotes. Rom Biotechnol Lett. 2020;25(6):2027–32. https://doi.org/10.25083/rbl/25.6/2027.2032
Kudryasheva NS, Rozhko TV. Effect of low-dose ionizing radiation on luminous marine bacteria: radiation hormesis and toxicity. J. Environ Radioact. 2015;142:68–77. https://doi.org/10.1016/j.jenvrad.2015.01.012
Redlarski G, Lewczuk B, Żak A, Koncicki A, Krawczuk M, Piechocki J, et al. The Influence of Electromagnetic Pollution on Living Organisms: Historical Trends and Forecasting Changes. Biomed Res Int. 2015(1):1–18. https://doi.org/10.1155/2015/234098
Meyn RE, Milas L, Ang KK. The role of apoptosis in radiation oncology. Int J Radiat Biol. 2009;85(2):107–15. https://doi.org/10.1080/09553000802662595
Vergallo C, Ahmadi M, Mobasheri H, Dini L. Impact of Inhomogeneous Static Magnetic Field (31.7–232.0 mT) Exposure on Human Neuroblastoma SH-SY5Y Cells during Cisplatin Administration. PLoS ONE. 2014;9(11):e113530. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0113530
Shckorbatov Y, Kolchigin N, Grabina V, Pasiuga V. Cellular effects of ultrawidebandu ultrashort pulsed radiation and microwave radiation exposure. In: 5th International Confernce on Ultrawideband and Ultrashort Impulse Signals. 2010 September 6–10, Sevastopol, Ukraine, IEEE; 2010. p. 34–9. https://doi.org/10.1109/UWBUSIS.2010.5609084
Sharafi S, Gholami A, Abbasdokht H. Effect of Magnetic Field on Seed Germination of Two Wheat Cultivars. World Academy of Science (Engineering and Technology). 2010;68:1079–84. Available from: https://sid.ir/paper/673132/en
Majd A, Shabrangi A. Effect of Seed Pretreatment by Magnetic Fields on Seed Germination and Ontogeny Growth of Agricultural Plants. In: Progress in Electromagnetics Research Symposium. 2009 March 23–27; Beijing, China, Cambridge, MA.: The Electromagnetics Academy; 2009. p. 1137–41.
Xing G, Zheng D, Zhou Q, Su R, Chen Q. Effect of pre-flight treatment with constant magnetic field on development of Artemia eggs retrieved from Chinese Satellite “8885”. Sci China B. 1991;34(6):699–705. PMID: 1888436
Miyakoshi J, Koji Y, Wakasa T, Takebe H. Long-term Exposure to a Magnetic Field (5 mT at 60 Hz) Increases X-ray-induced Mutations. J Radiat Res. 1999;40(1):13–21. https://doi.org/10.1269/jrr.40.13
Shckorbatov Y. New Developments in Chromatin Research. In: Simpson NM, Stewart VJ, editors. New Developments in Chromatin Research. Nova Science Publishers; 2012. p. 123–44.
Pasiuga OS, Pasiuga VN, Ryabuha SS, Shckorbatov YG. The Effects of Microwave Radiation and Weak Magnetic Field on State of Pea (Pisum Sativum L.) Cell Membrane and Nuclei. Bulletin of Kharkiv National Agrarian University, Biology series. 2014;32(2):38–45.
Skamrova GB, Evstigneev MP, Lantushenko AO, Lukianchuk GA, Salamatin VV, Shckorbatov YG. Influence of Microwave Radiation of Mobile WIMAX Network Frequencies on Human Buccal Epithelium Cells Membrane Permeability. Proceedings of VI Vernadsky Taurida National University, Biology and Chemistry Series. 2011;24(63)(4):282–91.
Banik S, Bandyopadhyay S, Ganguly S. Bioeffects of microwave–a brief review. Bioresour Technol. 2003;87(2):155–9. https://doi.org/10.1016/S0960-8524(02)00169-4
Lai H, Singh NP. Interaction of Microwaves and a Temporally Incoherent Magnetic Field on Single and Double DNA Strand Breaks in Rat Brain Cells. Electromagn Biol Med. 2005;24(1):23–9. https://doi.org/10.1081/JBC-200055046
Yao K, Wu W, Wang K, Ni S, Ye P, Yu Y, et al. Electromagnetic noise inhibits radiofrequency radiation-induced DNA damage and reactive oxygen species increase in human lens epithelial cells. Mol Vis. 2008;14:964–9.
Valerie K, Yacoub A, Hagan MP, Curiel DT, Fisher PB, Grant S, et al. Radiation-induced cell signaling: inside-out and outside-in. Mol Cancer Ther. 2007;6(3):789–801. https://doi.org/10.1158/1535-7163.MCT-06-0596
Lee KS, Choi JS, Hong SY, Son TH, Yu K. Mobile phone electromagnetic radiation activates MAPK signaling and regulates viability in Drosophila. Bioelectromagnetics. 2008;29(5):371–9. https://doi.org/10.1002/bem.20395
Blank M, Goodman R. Initial interactions in electromagnetic field-induced biosynthesis. J Cell Physiol. 2004;199(3):359–63. https://doi.org/10.1002/jcp.20004
Cao Y, Xu Q, Jin ZD, Zhang J, Lu MX, Nie JH, et al. Effects of 900-MHz Microwave Radiation on γ-Ray-Induced Damage to Mouse Hematopoietic System. J Toxicol Environ Health. 2010;73(7):507–13. https://doi.org/10.1080/15287390903523451
Cao Y, Xu Q, Jin ZD, Zhou Z, Nie JH, Tong J. Induction of adaptive response: Pre-exposure of mice to 900 MHz radiofrequency fields reduces hematopoietic damage caused by subsequent exposure to ionising radiation. Int J Radiat Biol. 2011;87(7):720–8. https://doi.org/10.3109/09553002.2010.550981
Khaled KAM, Sultan FM, Azzam CR. Gamma-rays and microwave irradiation influence on GUAR (Cyamopsis tetragonoloba): I - markers assisted selection for responding to mutagenic agents. SABRAO J Breed Genet. 2022;54(2):331–49. http://doi.org/10.54910/sabrao2022.54.2.10
Chandak A, Dhull SB, Chawla P, Fogarasi M, Fogarasi S. Effect of Single and Dual Modifications on Properties of Lotus Rhizome Starch Modified by Microwave and γ-Irradiation: A Comparative Study. Foods. 2022;11(19):2969. https://doi.org/10.3390/foods11192969
Babbitt JT, Kharazi AI, Taylor J, Bonds CB, Mirell SG, Frumkin E, et al. Hematopoietic neoplasia in C57BL/6 mice exposed to split-dose ionizing radiation and circularly polarized 60 Hz magnetic fields. carcinogenesis. 2000;21(7):1379–89. https://doi.org/10.1093/carcin/21.7.1379
Santini MT, Rainaldi G, Indovina PL. Cellular effects of extremely low frequency (ELF) tlectromagnetic fields. Int J Radiat Biol. 2009;85(4):294–313. https://doi.org/10.1080/09553000902781097
Kuznetsov K, Shckorbatov Y, Badiyan E, Bykov V, Pasiuga V, Mavrodi S. The method of detection of cellular effects of ionizing and non-ionizing radiation in human cells. In: Proceedings of the VI International Conference “Electronics and Applied Physics”. 2010 October 20–23, Kyiv, Ukraine, T. Shevchenko National University of Kyiv; 2010. p. 96.
Kuznetsov KA, Shckorbatov YG, Kolchigin NN, Nikolov OT. Changes of chromatin and cell membranes in exfoliated human buccal epithelium cells exposed to non-ionizing and ionizing electromagnetic fields. In: 8th International Conference on Ultrawideband and Ultrashort Impulse Signals. 2016 September 5 – 8, Odesa, Ukraine, Sevastopol National Technical University, IEEE; 2016. p. 167–70. https://doi.org/10.1109/UWBUSIS.2016.7724179
Kuznetsov KA, Miroshnik DB, Shckorbatov YG, Nikolov OT, Kolchigin NN. Modification of cellular effects of exposure to gamma-radiation by microwaves and magnetic field. In: 9th International Kharkiv Symposium on Physics and Engineering of Microwaves, Millimeter and Submillimeter Waves. 2016 June 20–24, Kharkiv, Ukraine, V. N. Karazin Kharkiv National University, IEEE; 2016. p. 1–3. https://doi.org/10.1109/MSMW.2016.7538012
Kuznetsov K, Kovalenko I, Shckorbatov Y. Exfoliated Human Cells Response to Microwaves and Magnetic Field Exposure. In: Proceedings of Asia Electro-magnetic Symposium. 2017 July 23 – 27, Bengaluru, India.
Khan MGM, Wang Y. Advances in the Current Understanding of How Low-Dose Radiation Affects the Cell Cycle. Cells. 2022;11(3):356. https://doi.org/10.3390/cells11030356
Kuznetsov K, Magda I, Kazansky O, Kolchigin N, Shckorbatov Y. The Influence of Ultrawideband Irradiation of Different Energy and Exposure Time on the State of Chromatin in Human Cells. In: 7th International Conference on Ultrawideband and Ultrashort Impulse Signals. 2014 September 15–19, Kharkiv, Ukraine, V.N. Karazin Kharkiv national University, IEEE; 2014. p. 49–51.
Kuznetsov KA, Pasiuha VN, Mahda IYu, Kazanskyi OV, Yvanchenko DD, Kolchyhyn NN, et al. Effect of different regimes of ultrawideband pulse irradiation on the state of chromatin in human cells. Photobiology and Photomedicine. 2014;12(3,4):64–70 (In Ukrainian). Available from: https://periodicals.karazin.ua/photomedicine/article/view/4615
Kuznetsov KA, Myroshnyk DB, Pasiuha VN, Yvanchenko DD, Kliuchyvska OI, Stoika RS, et al. The effect of microwave radiation and magnetic field on the state of nuclear chromatin and the content of the regulatory protein cyclin A in cells. Photobiology and Photomedicine. 2014;11(2):64–9 (In Russian). Available from: https://periodicals.karazin.ua/photomedicine/article/view/4079
Maffei ME. Magnetic Fields and Cancer: Epidemiology, Cellular Biology, and Theranostics. Int J Mol Sci. 2022;23(3):1339. https://doi.org/10.3390/ijms23031339
Kuznetsov K, Miroshnik D, Nikolov O, Shckorbatov Y. The Effect of Ionizing Radiation in Combination with Static Magnetic Field and Microwave Radiation on Chromatin State in Isolated Human Buccal Epithelium Cells. Visnyk of Lviv University. Biological series. 2014;(68):197–205.
Gupta S, Sharma RS, Singh R. Non-ionizing radiation as possible сarcinogen. Int J Environ Health Res. 2020;32(4):1–25. https://doi.org/10.1080/09603123.2020.1806212
Kuznetsov K, Nikolov O, Shckorbatov Y. Response of exfoliated human buccal epithelium cells to combined gamma radiation, microwaves, and magnetic field exposure estimated by changes in chromatin condensation and cell membrane permeability. Biophys Bull. 2016;2(36):19–26. https://doi.org/10.26565/2075-3810-2016-36-03
Sisakht M, Darabian M, Mahmoodzadeh A, Bazi A, Shafiee SM, Mokarram P, et al. The role of radiation induced oxidative stress as a regulator of radio-adaptive responses. Int J Radiat Biol. 2020;96(5):561–76. https://doi.org/10.1080/09553002.2020.1721597
Akbari A, Jelodar G, Nazifi S, Afsar T, Nasiri K. Oxidative Stress As The Underlying Biomechanism Of Detrimental Outcomes Of Ionizing and Non-Ionizing Radiation on Human Health: Antioxidant Protective Strategies. Zahedan J Res Med Sci. 2019;21(4):e85655. https://doi.org/10.5812/zjrms.85655
Wang Z, Liu B, Tu J, Xiang J, Xiong H, Wu Y, et al. PLGA Nanoparticles Loaded with Sorafenib Combined with Thermosensitive Hydrogel System and Microwave Hyperthermia for Multiple Sensitized Radiotherapy. Pharmaceutics. 2023;15(2):487. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics15020487
Miyatake SI, Kawabata S, Hiramatsu R, Kuroiwa T, Suzuki M, Kondo N, et al. Boron Neutron Capture Therapy for Malignant Brain Tumors. Neurol Med Chir. 2016;56(7):361–71. https://doi.org/10.2176/nmc.ra.2015-0297
Heber EM, Hawthorne MF, Kueffer PJ, Garabalino MA, Thorp SI, Pozzi ECC, et al. Therapeutic efficacy of boron neutron capture therapy mediated by boron-rich liposomes for oral cancer in the hamster cheek pouch model. Proc Natl Acad Sci USA. 2014;111(45):16077–81. https://doi.org/10.1073/pnas.1410865111
Lowy RJ, Vavrina GA, LaBarre DD. Comparison of gamma and neutron radiation inactivation of influenza A virus. Antiviral Res. 2001;52(3):261–73. https://doi.org/10.1016/S0166-3542(01)00169-3
Barendsen GW, Broerse JJ. Experimental radiotherapy of a rat rhabdomyosarcoma with 15 MeV neutrons and 300 kV X-rays. Eur J Cancer. 1969;5(4):373–91. https://doi.org/10.1016/0014-2964(69)90051-6
Paterson L. Low Dose Effects of Gamma and Neutron Radiation on Peripheral Blood Lymphocytes [thesis]. Hamilton, ON: McMaster University; 2017. 189 p.
Peak MJ, Wang L, Hill CK, Peak JG. Comparison of repair of DNA double-strand breaks caused by neutron or gamma radiation in cultured human cells. Int. J. Radiat. Biol. 1991;60(6):891–8.
Cohen BL. Cancer Risk from Low-Level Radiation. Am J Roentgenol. 2002;179(5):1137–43. https://doi.org/10.2214/ajr.179.5.1791137
Broustas CG, Xu Y, Harken AD, Garty G, Amundson SA. Comparison of gene expression response to neutron and x-ray irradiation using mouse blood. BMC Genomics. 2017;18(1). https://doi.org/10.1186/s12864-016-3436-1
Tačev T, Ptáčková B, Strnad V. Californium-252 (252Cf) versus Conventional Gamma Radiation in the Brachytherapy of Advanced Cervical Carcinoma. Long-Term Treatment Results of a Randomized Study. Strahlenther Onkol. 2003; 6:377–84
Zhang J, He Y, Shen X, Jiang D, Wang Q, Liu Q, et al. γ-H2AX responds to DNA damage induced by long-term exposure to combined low-dose-rate neutron and γ-ray radiation. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2016;795:36–40. https://doi.org/10.1016/j.mrgentox.2015.11.004
Michnik A, Polaczek-Grelik K, Staś M, Sadowska-Krępa E, Gibińska J, Drzazga Z. Delayed Effects of Neutron Radiation on Human Serum. J Therm Anal Calorim. 2016;126(1):37–45. https://doi.org/10.1007/s10973-016-5255-7
Ng CYP, Kong EY, Konishi T, Kobayashi A, Suya N, Cheng SH, et al. Low-dose neutron dose response of zebrafish embryos obtained from the Neutron exposure Accelerator System for Biological Effect Experiments (NASBEE) facility. Radiat Phys Chem. 2015;114:12–7. https://doi.org/10.1016/j.radphyschem.2015.05.020
Saeed A, Raouf GA, Nafee SS, Shaheen SA, Al-Hadeethi Y. Effects of Very Low Dose Fast Neutrons on Cell Membrane and Secondary Protein Structure in Rat Erythrocytes. PLoS ONE. 2015;10(10):e0139854. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0139854
Harbron RW. Cancer Risks from Low Dose Exposure to Ionising Radiation – Is the Linear no-threshold Model still relevant? Radiography. 2012;18(1):28–33. https://doi.org/10.1016/j.radi.2011.07.003
Luo Ke-yong. Stimulation Growth Effect of Eriocheir Sinensis Treated with low-dose Neutron. J Nucl Agric Sci. 2006;20(1):74–8.
Kuznetsov K, Kizim P, Berezhnoy A, Shchus O, Onyshchenko G. Cell stress response to low-dose neutron radiation. MSABP. 2020;1(1):036–42. https://doi.org/10.30574/msabp.2020.1.1.0022
Kuznetsov K, Kyzym P, Berezhnoy A, Shchus A, Onishchenko G, Shckorbatov Y. Human buccal epithelium cell response to low intensive neutron radiation. Biophys Bull. 2018;(40):17–25. https://doi.org/10.26565/2075-3810-2018-40-02
Kuznetsov K, Kyzym P, Onishchenko G, Berezhnoy A, Shckorbatov Y. Chromatin Changes under Exposure to Neutron Radiation. In: Advances in Cell Biology and Biotechnology. 2015 October 11–13, Lviv, Ukraine, Institute of Cell Biology, NAS of Ukraine; 2015. p. 83.
Kuznetsov K, Kyzym P, Berezhnoy A, Shchus A, Onishchenko G, Shckorbatov Y. Cell Membrane Permeability Changes under Exposure to Neutron Radiation. In: Proceedings of 6th Ukrainian Congress for Cell Biology with International Representation. 2019 June 18–21, Yaremche, Ukraine, Institute of Cell Biology, NAS of Ukraine; 2019. p. 27.
Guéguen Y, Bontemps A, Ebrahimian TG. Adaptive Responses to Low Doses of Radiation or chemicals: Their Cellular and Molecular Mechanisms. Cell Mol Life Sci. 2018;76(7):1255–7. https://doi.org/10.1007/s00018-018-2987-5
Lumniczky K, Impens N, Armengol G, Candéias S, Georgakilas AG, Hornhardt S, et al. Low Dose Ionizing Radiation Effects on the Immune System. Environ Int. 2021;149:106212. https://doi.org/10.1016/j.envint.2020.106212
Karam H, Mohamed M. Beneficial Effect of Low Dose Gamma Irradiation or Quercetin on Cerastes cerastes Snake Venom Induced Toxicity in Male Rats. Toxin Rev. 2019;40(1):35–47. https://doi.org/10.1080/15569543.2019.1580746
Huang CY, Lai ZY, Hsu TJ, Chou F, Li H, Chuang YJ. Boron Neutron Capture Therapy Eliminates Radioresistant Liver Cancer Cells by Targeting DNA Damage and Repair Responses. J Hepatocell Carcinoma. 2022;9:1385–401. https://doi.org/10.2147/JHC.S383959
Авторське право (c) 2024 К. А. Кузнецов, Г. М. Онищенко, О. Т. Ніколов
Цю роботу ліцензовано за Міжнародня ліцензія Creative Commons Attribution 4.0.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
