Значення ембріональної телячої сироватки в складі гіперосмолярних розчинів 1,2-пропандіолу для збереження морфологічної цілісності оваріальної тканини

І. А. Трутаєва
В. В. Кірошка
А. А. Гавас
В. А. Бондаренко

Ключові слова: оваріальна тканина, 1, 2-пропандіол, об'єм ооцитів, морфологічна структура

Анотація

Для оптимізації кріоконсервування оваріальної тканини з метою її використання у клінічній практиці було проведено порівняльний аналіз динаміки об'ємної і морфологічної трансформації тканини яєчника при поетапному насиченні (1,5–3 М) 1,2-пропандіолом (1,2-ПД) в середовищах різного складу. Показано, що збереження структури оваріальної тканини і об'ємні зміни в умовах дії гіперосмолярного розчину проникаючого кріопротектора (КП) визначаються композиційним складом середовища насичення і часом експозиції. При 10 хв інкубації тканини у всіх досліджуваних випадках не відзначалося морфологічних і об'ємних змін в структурі тканини на етапі насичення в розчинах 1,2-ПД. Збільшення часу експозиції до 30 хв виявило стиснення клітин в середовищі насичення, яке містить 230 мМ NaCl, до 40% в 3 М 1,2-ПД. Присутність ембріональної телячої сироватки (ЕТС) в аналогічних умовах приводило до набухання клітин як в 1,5 М концентрації 1,2-ПД, так і в 3 М. Об'єм ооцитів при збільшенні концентрації 1,2-ПД залишався в межах фізіологічних значень при використанні вихідного ізотонічного середовища. Експериментально доведено, що максимальне морфологічне збереження оваріальної тканини після насичення/видалення КП досягалася при введенні 10% ЕТС в гіперосмолярні розчини КП.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Посилання

Уикли Б. Электронная микроскопия для начинающих – М.: Мир, 1975. – 324с. /Uikli B. Elektronnaya mikroskopiya dlya nachinayushchikh– M.: Mir, 1975. – 324 s./

Amorim C.A., Rondina D., Rodrigues A. P.R. et al. Cryopreservation of isolated ovine primordial follicles with propylene glycol and glycerol // Fertility and Sterility. – 2004. – Vol.81, no 1. – P. 735–740.

Andersen C.Y., Rosendahl M., Byskov A.G. et al. Two successful pregnancies following autotransplantation of frozen/thawed ovarian tissue // Hum. Reprod. – 2008. – Vol.23, no 10. – P. 2266–2272.

Demeestere I., Simon P., Buxant F. et al. Ovarian function and spontaneous pregnancy after combined heterotopic and orthotopic cryopreserved ovarian tissue transplantation in a patient previously treated with bone marrow transplantation: case report // Hum. Reprod. – 2006a. – Vol.21. – P. 2010–2014.

Demeestere I., Simon P., Emiliani S. et al. Options to preserve fertility before oncological treatment: cryopreservation of ovarian tissue and its clinical application // Acta Clin. Belg. – 2006b. – Vol.61, no 5. – P. 259–263.

Demeestere I., Simon P., Emiliani S. et al. Orthotopic and heterotopic ovarian tissue transplantation // Hum. Reprod. Update. – 2009. – Vol.15, no 6. – P. 649–665.

Demirci B., Lornage J., Salle B. et al. Follicular viability and morphology of sheep ovaries after exposure to cryoprotectant and cryopreservation with different freezing protocols // Fertility and Sterility. – 2001. – Vol.75. – P. 754–762.

Donnez J., Dolmans M.M., Demylle D. et al. Livebirth after orthotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue // Lancet. – 2004. – Vol.364. – P. 1405–1410.

Ghinea N., Fixman A., Alexandru D. et al. Identification of albumin-binding proteins in capillary endothelial cells // J. Cell Biol. – 1988. – Vol. 107, no 1. – P. 231–239.

Ghinea N., Eskenasy M., Simionescu M., Simionescu N. Endothelial albumin binding proteins are membrane-associated components exposed on the cell surface // J. Cell Biol. – 1989. – Vol.264. – P. 4755–4758.

Gougeon A. Dynamics of follicular growth in the human: a model from preliminary results // Hum. Reprod. – 1986. – No 1. – Р. 81–87.

Hreinsson J., Zhang P., Swahn M.L. et al. Cryopreservation of follicles in human ovarian cortical tissue. Comparison of serum and human serum albumin in the cryoprotectant solutions // Hum. Reprod. – 2003. – Vol.18. – P. 2420–2428.

Le Gal F., Gasqui P., Renard J.P. Differential osmotic behavior of mammalian oocytes before and after maturation: a quantitative analysis using goat oocytes as a model // Cryobiology. – 1994. – Vol.31. – P. 154–170.

Mazur P., Schneider U. Osmotic responses of preimplantation mouse and bovine embryos and their cryobiological implications // Cell Biophys. – 1986. – Vol.8. – P. 259–285.

Siflinger-Birnboim A., Malik A.B. Neutrophil adhesion to endothelial cells impairs the effects of catalase and glutathione in preventing endothelial injury // J. Cell Physiol. – 1993. – Vol.155, no 2. – P. 234–239.

Neto V., Buff S., Lornage J., Bottollier B. Effects of different freezing parameters on the morphology and viability of preantral follicles after cryopreservation of doe rabbit ovarian tissue // Fertil. Steril. – 2008. – Vol.89, no 5. – P. 1348–1356.

Newton H., Aubard Y., Rutherford A. et al. Low temperature storage and grafting of human ovarian tissue // Hum. Reprod. – 1996. – Vol.11. – P. 1487–1491.

Newton H., Pegg D.E., Barrass R., Gosden R.G. Osmotically inactive volume, hydraulic conductivity and permeability to dimethyl sulphoxide of human mature oocytes // Journal of Reproduction and Fertility. – 1999. – Vol.117. – P. 27–23.

Paynter S.J., Cooper A., Fuller B.J., Shaw R.W. Cryopreservation of bovine ovarian tissue: structural normality of follicles after thawing and culture in Vitro // Cryobiology. –1999. – Vol.38. – P. 301–309.

Santos R.R., Hurk R.v.d., Rodrigues A.P.R. et al. Effect of cryopreservation on viability, activation and growth of in situ and isolated ovine early-stage follicles // Animal Reproduction Science. – 2007. – Vol.99. – P. 53–64.

Schnitzer J.E., Bravo J. High affinity binding, endocytosis and degradation of conformationally-modified albumins: Potential role of gp30 and gp18 as novel scavenger receptors // J. Biol. Chem. – 1993. – Vol.268. – P. 7562–7570.

Schubert B., Canis M., Darcha C. et al. Human ovarian tissue from cortex surrounding benign cysts: a model to study ovarian tissue cryopreservation // Human Reproduction. – 2005. – Vol.20, no 7. – P. 1786–1792.

Shepard J.M., Goderie S.K., Brzyski N. et al. Effects of alterations in endothelial cell volume on transendothelial albumin permeabiIity // Journal of Cellular Physiology. – 1987. – Vol.133. – P. 389–394.

Songsasen N., Ratterree M.S., VandeVoort C.A. et al. Permeability characteristics and osmotic sensitivity of rhesus monkey (Macaca mulatta) oocytes // Human Reproduction. – 2002. – Vol.17, no 7. – P. 1875–1884.

Wang L., Liu J., Zhou G.-B. et al. Quantitative Investigations on the effects of exposure durations to the combined cryoprotective agents on mouse oocyte vitrification procedures // Biology of Reproduction. – 2011. – Vol.85. – P. 884–894.

Woods E.J., Benson J.D., Agca Y., Critser J.K. Fundamental cryobiology of reproductive cells and tissues // Cryobiology. – 2004. – Vol.48. – P. 146–156.