Молекулярно-динамічне моделювання різних спіральних форм полірібоцітіділовой кислоти

  • K. V. Miroshnychenko Інститут радіофізики та електроніки ім. А Я. Усикова НАН України
  • A. V. Shestopalova Інститут радіофізики та електроніки ім. А Я. Усикова НАН України
Ключові слова: моделювання молекулярної динаміки, полірібоцітіділовая кислота, протонований цітідін, i-мотив, водневі зв'язки, водні містки

Анотація

Залежно від кислотності середовища. При нейтральному рН polyrC приймає односпіральну форму, в кислому середовищі (рН 3.5 - 5.7) стає можливим утворення мультіцепочечних структур polyrC завдяки наявності полупротонірованних пар С + С, при рН <3.5 polyrC існує у вигляді невпорядкованого клубка. У літературі ведеться дискусія щодо спіральної форми polyrC в інтервалі рН 3.5 - 5.7. Є докази як на користь дуплексу, так і на користь четирехспіральної форми (i-мотиву). У зв'язку з цим, дослідження спіральних форм polyrC представляє особливий інтерес. У даній роботі проведено молекулярно-динамічне моделювання односпіральної форми polyrC r (C10), дуплексу [r (C10)] 2 і двох топологій 3'E і 5'E i-мотиву polyrC [r (C5)] 4. Отримано стабільні 5 нс траєкторії для 3'E і 5'E топологій четирехспіральної polyrC [r (C5)] 4. Водневі зв'язки між підставами в C + -C парах i-мотиву зберігалися протягом всієї траєкторії. У желобках i-мотиву були виявлені водневі зв'язку та водні містки, що з'єднують ланцюга, що відносяться до різних дуплекс. Характерні для i-мотиву СН --- Про водневі зв'язку в малих желобках були відсутні протягом більшої частини траєкторії. Досліджені нами моделі двухспіральної polyrC [r (C10)] 2 (helical rise = 3.11 Å, helical twist = 30 ° і helical rise = 3.11 Å, helical twist = 44 °) виявилися нестійкими і зруйнувалися в процесі моделювання. Якщо polyrC і існує у вигляді дуплексу, то його структура істотно відрізняється від вивчених моделей. Структура односпіральної polyrC r (C10) зазнала значних змін в процесі моделювання: середньоквадратичне відхилення щодо першого знімка траєкторії склало ~ 5 Å. Спостерігалося значне порушення стекінг підстав. Можливо, до цього призвело наявність великого числа внутрішньо молекулярних водневих зв'язків в структурі односпіральної polyrC в молекулярно-динамічної траєкторії. В процесі моделювання були зафіксовані переходи цукрів з C3'-endo в C2'-endo конформацию. У разі четирехспіральной polyrC велика частина цукрів залишилася в C3'-endo і C4'-exo конформаціях, а в разі односпіральной polyrC більшість цукрових залишків перейшли в нехарактерну для неї C2'-endo конформацию.

Завантаження

##plugins.generic.usageStats.noStats##

Біографії авторів

K. V. Miroshnychenko, Інститут радіофізики та електроніки ім. А Я. Усикова НАН України

вул. Проскури, 12, Харків 61085, Україна

A. V. Shestopalova, Інститут радіофізики та електроніки ім. А Я. Усикова НАН України

вул. Проскури, 12, Харків 61085, Україна

Посилання

1. Зенгер В. Принципы структурной организации нуклеиновых кислот. Москва: "МИР", 1987, С. 319-342.

2. Arnott S., Chandrasekaran R., Leslie A.G. // J. Mol. Biol. 1976. V.106. P.735-748.

3. Borah B., Wood J.L. // J. Mol. Struct. 1976. V.30. P.13-30.

4. Hartman K.A., Rich A. // J. Am. Chem. Soc. 1965. V.87. P.2033-2039.

5. Langridge R., Rich A. // Nature. 1963. V.198. P.725-728.

6. Snoussi K., Nonin-Lecomte S., Leroy J.-L. // J. Mol. Biol. 2001. V.309. P.139-153.

7. Gehring K., Leroy J.-L., Gueron M. // Nature. 1993. V.363. P.561-564.

8. Manzini G., Yathindra N., Xodo L.E. // Nucl. Acids Res. 1994. V.22. P.4634-4640.

9. Kang C.H., Berger I., Lockshin C., Ratliff R., Moyzis R., Rich A. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V.92. P.3874-3878.

10. Lacroix L., Mergny J.-L., Leroy J.-L., Helene C. // Biochemistry. 1996 V.35. P.8715-8722.

11. Gueron M., Leroy J.-L. // Curr. Opin. Struct. Biol. 2000. V.10. P.326-331.

12. Cai L., Chen L., Raghavan S., Ratliff R., Moyzis R., Rich A. // Nucl. Acids Res. 1998. V.26. P.4696-4705.

13. Kanaori K., Shibayama N., Gohda K., Tajma K., Makino K. // Nucl. Acids Res. 2001. V.29. P.831-840.

14. Sponer J., Leszczynski J., Vetterl V., Hobza P. // J. Biomol. Struct. Dyn. 1996. V.13. P.695-706.

15. Berger I., Egli M., Rich A. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V.93. P.12116-12121.

16. Leroy J.-L., Snoussi K., Gueron M. // Magn. Reson. Chem. 2001. V.39. P.171-176.

17. Spackova N., Berger I., Egli M., Sponer J. // J. Am. Chem. Soc. 1998. V.120. P.6147–6151.

18. Gallego J., Golden E., Stanley D., Reid B. // J. Mol. Biol. 1999. V.285 P.1039-1052.

19. Malliavin T.E.; Gau, J.; Snoussi, K.; Leroy, J.-L. Biophys J 2003, 84, 3838-3847.

20. Mergny J.-L., Lacroix L., Han X., Leroy J.-L., Helene C. // J. Am. Chem. Soc. 1995. V.117. P.8887–8898.

21. Lacroix L., Mergny J.-L. // Arch. Of Biochem. and Biophys. 2000. V.381. P.153-163.

22. Krishnan-Ghosh Y., Stephens E., Balasubramanian S. // Chem. Commun. 2005. P.5278-5280.

23. Sharma N.K., Ganesh K.N. // Chem. Commun. 2005. P.4330-4332.

24. Kumar N., Nielsen J.T., Maiti S., Petersen M. // Angew. Chem. Int. Ed. 2007. V.46. P.9220-9222.

25. Modi S., Wani A.H., Krishnan Y. // Nucl. Acids Res. 2006. V.34. P.4354-4363.

26. Chakraborty S., Modi S., Krishnan Y. // Chem. Commun. 2008. P.70-72.

27. Chakraborty S., Krishnan Y. // Biochimie. 2008. V.90. P.1088-1095.

28. Maleev V., Semenov M., Kashpur V., Bolbukh T., Shestopalova A., Anishchenko D. // J. Mol. Struct. 2002. V.605. P.51-61.

29. Petrovic A.G., Polavarapu P.L. // J. Phys. Chem. B. 2006. V.110. P.22826-22833.

30. Cohen B., Larson M.H., Kohler B. // Chem. Phys. 2008. V.350. P.165-174.

31. Frisch M.J., Trucks G.W., Schlegel H.B., Scuseria G.E., Robb M.A., Cheeseman J.R., Montgomery J.A. Jr., Vreven T., Kudin K.N., Burant J.C., Millam J.M., Iyengar S.S., Tomasi J., Barone V., Mennucci B., Cossi M., Scalmani G., Rega N., Petersson G.A., Nakatsuji H., Hada M., Ehara M., Toyota K., Fukuda R., Hasegawa J., Ishida M., Nakajima T., Honda Y., Kitao O., Nakai H., Klene M., Li X., Knox J.E., Hratchian H.P., Cross J.B., Adamo C., Jaramillo J., Gomperts R., Stratmann R.E., Yazyev O., Austin A.J., Cammi R., Pomelli C., Ochterski J.W., Ayala P.Y., Morokuma K., Voth G.A., Salvador P., Dannenberg J.J., Zakrzewski V.G., Dapprich S., Daniels A.D., Strain M.C., Farkas O., Malick D.K., Rabuck A.D., Raghavachari K., Foresman J.B., Ortiz J.V., Cui Q., Baboul A.G., Clifford S., Cioslowski J., Stefanov B.B., Liu G., Liashenko A., Piskorz P., Komaromi I., Martin R.L., Fox D.J., Keith T., Al-Laham M.A., Peng C.Y., Nanayakkara A., Challacombe M., Gill P.M.W., Johnson B., Chen W., Wong M.W., Gonzalez C., Pople J.A. GAUSSIAN-03, Revision A.1. Gaussian Inc. Pittsburgh. PA. 2003.

32. Cornell W.D., Cieplak P., Bayly C.I., Gould I.R., Merz K.M. Jr., Ferguson D.M., Spellmeyer D.C., Fox T., Caldwell J.W., Kollman P.A. // J. Am. Chem. Soc. 1995. V.117. P.5179-5197.

33. Cieplak P., Cornell W.D., Bayly C., Kollman P.A. // J. Comput. Chem. 1995. V.16. P.1357-1377.

34. Wang J., Cieplak P., Kollman P.A. // J. Comput. Chem. 2000. V.21 P.1049-1074.

35. Dupradeau F.-Y., Pigache A., Zaffran T., Cieplak P. R.E.D. Version 2.0 User's Manual and Tutorial. Universite' de Picardie Jules Verne. Amiens. France. 2005.

36. Schmidt M.W., Baldridge K.K., Boatz J.A., Elbert S.T., Gordon M.S., Jensen J.H., Koseki S., Matsunaga N., Nguyen K.A., Su S.J., Windus T.L., Dupuis M., Montgomery J.A. // J. Comput. Chem. 1993. V.14. P.1347-1363.

37. Case D.A., Darden T.A., Cheatham T.E. III, Simmerling C.L., Wang J., Duke R.E., Luo R., Merz K.M., Wang B., Pearlman D.A., Crowley M., Brozell S., Tsui V., Gohlke H., Mongan J., Hornak V., Cui G., Beroza P., Schafmeister C., Caldwell J.W., Ross W.S., Kollman P.A. AMBER 8. University of California. San Francisco. CA. 2004.

38. Tsui V., Case D.A. // Biopolymers (Nucl. Acid Sci.). 2000. V.56 P.275-291.

39. Draper D.E., Misra V.K. // Nat. Struct. Biol. 1998. V.5. P.927-930.

40. Draper D.E. // Biophys. J. 2008. V.95. P.5489-5495

41. Jorgensen W.L., Chandrasekhar J., Madura J., Klein M.L. // J. Chem. Phys. 1983. V.79 P.926-935.

42. Darden T., York D., Pedersen L. // J. Chem. Phys. 1993. V.98, P.10089-10092.

43. Izaguirre J.A., Catarello D.P., Wozniak J.M., Skeel R.D. // J. Chem. Phys. 2001. V.114 P.2090-2098.

44. Lu X.-J., Olson W.K. // Nucl. Acids Res. 2003. V.31. P.5108-5121.

45. Humphrey W., Dalke A., Schulten K. // J. Mol. Graphics. 1996. V.14 P.33-38.
Цитовано
Як цитувати
Miroshnychenko, K. V., & Shestopalova, A. V. (1). Молекулярно-динамічне моделювання різних спіральних форм полірібоцітіділовой кислоти. Біофізичний вісник, 2(21), 5-18. вилучено із https://periodicals.karazin.ua/biophysvisnyk/article/view/9578
Розділ
Молекулярна біофізика