Взаємодія нових ICT-барвників з ліпідними мембранами
Ключові слова:
ICT- барвники, ліпосоми, фосфатидилхолін, кардіоліпін, холестерин
Анотація
В даній роботі була проведена оцінка чутливості нових ICT-барвників до зміни фізико-хімічних
властивостей ліпідного бішару. Розподіл барвника ICT4 в ліпідну фазу модельних мембран, що
складались із цвіттеріонного ліпіда фосфатидилхоліна і його сумішей із аніонним ліпідом кардіоліпіном та холестерином супроводжувався зменшенням квантового виходу флуоресценції та короткохвильовим зсувом максимума еміссії. Навпроти, для барвника ICT2 спостерігалось десятикратне зростання квантового виходу, без зсуву максимума еміссії. Аналіз коефіцієнтів розподілу показав, що включення кардіоліпіну та холестерину в фосфатидилхоліновий бішар підвищує ефективність вбудовування ICT2 в ліпосомальні мембрани у порівнянні з фосфатидилхоліновими ліпосомами.
Завантаження
##plugins.generic.usageStats.noStats##
Посилання
1. Valeur B. Molecular fluorescence:principles and applications. Wiley-VCH Verlag GmbH. 2001.
2. Lakowicz J.R. Principles of fluorescent spectroscopy. Springer: Singapore. 2006.
3 Xu Z., Xiao Y., Qian X., Cui J., Cui D. Ratiometric and selective fluorescent sensor for CuII based on internal charge transfer (ICT) // Org. Lett. 2005. V. 7(5). P. 889-892.
4. Mause M. Photoinduced intramolecular charge transfer in donor-acceptor Biaryls and resulting applicational aspects regarding fluorescent probes and solar energy conversion // IBBN: 1-58112-030-3.
5 Lin L.R., Li Z., Yang W.L., Chen H., Jiang Y.B. Intramolecular charge transfer dual fluorescence pH sensing using p-dibutylaminobenzoic acid-β-cyclodextrin inclusion complex // Chin. Chem. Lett. 2003. V. 14(5). P. 495 – 498.
6. Čmiel V., Mravec F., Halasová T., Sekora J., Provazník I. Emission properties of potential-responsive probe Di-4-ANEPPS // Analysis of Biomedical Signals and Images. 2010. V. 20. P. 359 - 363.
7. Pal S.K., Sukul D., Mandal D., Bhattacharyya K. Solvation dynamics of DCM in lipid // J. Phys. Chem. B. 2000. V. 104. P. 4529 - 4531.
8. Koehorst R.B.M., Spruijt R.B., Hemminga M.A. Site-directed fluorescence labeling of a membrane protein with BADAN: Probing protein topology and local environment // Biophys. J. 2008. V. 94. P. 3945 – 3955.
9. Koehorst R.B.M., Laptenok S., van Oort B., van Hoek A., Spruijt R.B., van I.H.M. Stokkum, van Amerongen H., Hemminga M.A. Profiling of dynamics in protein–lipid–water systems: a time-resolved fluorescence study of a model membrane protein with the label BADAN at specific membrane depths // Eur. Biophys. J. 2010. V. 39. P. 647 – 656.
10. Haidekker M.A., Brady T.P., Lichlyter D., Theodorakis E.A. Effects of solvent polarity and solvent viscosity on the fluorescent properties of molecular rotors and related probes // Bioorg. Chem. 2005. V. 33. P. 415 – 425.
11. Loutfy R.O. Fluorescence probes for polymer free-volume // Pure Appl Chem. 1986. V. 58. P. 1239 – 1248.
12. Kung C.E. Reed J.K Microviscosyty measurements of phospholipid bilayers using fluorescent dyes that undergo torsional relaxation // Biochem.1986 V.25. P. 6114 – 6121.
13. Lukac S., Thermically induced variations in polarity and microviscosity of phospholipid and surfactant vesicles monitored with a probe forming an intramolecular charge-transfer complex // Am. Chem. Soc.1984. V. 106. P. 4386 – 4392.
14. Haidekker M.A., Heureux N. L., Frangos J.A., Fluid shear stress increases membrane fluidity in endothelial cells: a study with DCVJ fluorescence // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2000. V. 278. P. 401 – 406.
15. Mui B., L. Chow L., Hope M.J. Extrusion technique to generate liposomes of defined size // Meth. Enzymol. 2003. V. 367.P. 3 - 14.
16. Bartlett G. Phosphorus assay in column chromatography // J. Biol. Chem. 1959.V. 234.P. 466 - 468.
17. Santos N.C., Prieto M., Castanho M.A.R.B. Quantifying molecular partition into model systems of biomembranes: an emphasis on optical spectroscopic methods // Biochim. Biophys. Acta. 2003. V. 1612. P. 123 - 135.
18. Heerklotz H., Binder H., Lantzsch, G. Klose G., Blume A. Lipid/detergent interaction thermodynamics as a function of molecular shape // J. Phys. Chem. 1997. V. 101.p. 639 - 645.
2. Lakowicz J.R. Principles of fluorescent spectroscopy. Springer: Singapore. 2006.
3 Xu Z., Xiao Y., Qian X., Cui J., Cui D. Ratiometric and selective fluorescent sensor for CuII based on internal charge transfer (ICT) // Org. Lett. 2005. V. 7(5). P. 889-892.
4. Mause M. Photoinduced intramolecular charge transfer in donor-acceptor Biaryls and resulting applicational aspects regarding fluorescent probes and solar energy conversion // IBBN: 1-58112-030-3.
5 Lin L.R., Li Z., Yang W.L., Chen H., Jiang Y.B. Intramolecular charge transfer dual fluorescence pH sensing using p-dibutylaminobenzoic acid-β-cyclodextrin inclusion complex // Chin. Chem. Lett. 2003. V. 14(5). P. 495 – 498.
6. Čmiel V., Mravec F., Halasová T., Sekora J., Provazník I. Emission properties of potential-responsive probe Di-4-ANEPPS // Analysis of Biomedical Signals and Images. 2010. V. 20. P. 359 - 363.
7. Pal S.K., Sukul D., Mandal D., Bhattacharyya K. Solvation dynamics of DCM in lipid // J. Phys. Chem. B. 2000. V. 104. P. 4529 - 4531.
8. Koehorst R.B.M., Spruijt R.B., Hemminga M.A. Site-directed fluorescence labeling of a membrane protein with BADAN: Probing protein topology and local environment // Biophys. J. 2008. V. 94. P. 3945 – 3955.
9. Koehorst R.B.M., Laptenok S., van Oort B., van Hoek A., Spruijt R.B., van I.H.M. Stokkum, van Amerongen H., Hemminga M.A. Profiling of dynamics in protein–lipid–water systems: a time-resolved fluorescence study of a model membrane protein with the label BADAN at specific membrane depths // Eur. Biophys. J. 2010. V. 39. P. 647 – 656.
10. Haidekker M.A., Brady T.P., Lichlyter D., Theodorakis E.A. Effects of solvent polarity and solvent viscosity on the fluorescent properties of molecular rotors and related probes // Bioorg. Chem. 2005. V. 33. P. 415 – 425.
11. Loutfy R.O. Fluorescence probes for polymer free-volume // Pure Appl Chem. 1986. V. 58. P. 1239 – 1248.
12. Kung C.E. Reed J.K Microviscosyty measurements of phospholipid bilayers using fluorescent dyes that undergo torsional relaxation // Biochem.1986 V.25. P. 6114 – 6121.
13. Lukac S., Thermically induced variations in polarity and microviscosity of phospholipid and surfactant vesicles monitored with a probe forming an intramolecular charge-transfer complex // Am. Chem. Soc.1984. V. 106. P. 4386 – 4392.
14. Haidekker M.A., Heureux N. L., Frangos J.A., Fluid shear stress increases membrane fluidity in endothelial cells: a study with DCVJ fluorescence // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2000. V. 278. P. 401 – 406.
15. Mui B., L. Chow L., Hope M.J. Extrusion technique to generate liposomes of defined size // Meth. Enzymol. 2003. V. 367.P. 3 - 14.
16. Bartlett G. Phosphorus assay in column chromatography // J. Biol. Chem. 1959.V. 234.P. 466 - 468.
17. Santos N.C., Prieto M., Castanho M.A.R.B. Quantifying molecular partition into model systems of biomembranes: an emphasis on optical spectroscopic methods // Biochim. Biophys. Acta. 2003. V. 1612. P. 123 - 135.
18. Heerklotz H., Binder H., Lantzsch, G. Klose G., Blume A. Lipid/detergent interaction thermodynamics as a function of molecular shape // J. Phys. Chem. 1997. V. 101.p. 639 - 645.
Цитовано
Як цитувати
Zhytnyakovskaya, O. A., Kutsenko, O. K., Trusova, V. M., Gorbenko, G. P., Deligeorgiev, T., Kaloyanova, S., & Lesev, N. (1). Взаємодія нових ICT-барвників з ліпідними мембранами. Біофізичний вісник, 2(25). вилучено із https://periodicals.karazin.ua/biophysvisnyk/article/view/2748
Розділ
Біофізика клітини
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
