Порівняльний екологічний аналіз фауни трематод риб каскаду водосховищ на р. Кура в Азербайджані
Анотація
У 2007–2022 роках. методом повного паразитологічного перерізу у чотирьох водосховищах, що утворюють каскад на р. Кура, на зараженість трематодами досліджено 1243 екземплярів риби 30 видів. З цією метою у Шамкірськом водосховищі досліджено 258 риб 21 виду, Єнікендськом – 252 риб 21 виду, Мінгечавірськом – 341 риб 25 видів, Варваринськом – 338 риб 26 видів. В результаті проведених досліджень виявлено 39 видів трематод, з них 11 видів паразитують у кришталиках очей, 9 видів у кишечнику, 4 види в м'язах та під шкірою, по одному виду у кровотоку, склоподібному тілі очей, шлунке, порожнині рота та стравоході, сечовому міхурі, сечоводах та нирках, серці, головному мозку, шкірі та плавцях, м'язах, стінках плавального міхура, нирках та лусе; 2 види на стадії метацеркарію мешкають у різних тканинах риб, а на дорослій стадії – у кишечнику хижих риб. Серед знайдених трематод 14 видів використовують рибу тільки як остаточного господаря, 23 види паразитують у рибі тільки на личинковій стадії, завершуючи свій розвиток у рибоїдних птахів, 2 види використовують різних риб як другого проміжного господаря, а хижих риби як остаточного господаря. При порівнянні досліджуваних водойм виявилося, що найбільша кількість видів трематод виявлена у риб відносно невеликого Варварінського водосховища, де риби були заражені 27 видами трематод. Це пов'язано з тим, що більша частина цього водоймища мілководна, має слабку течію і багато водної рослинності, це створює сприятливі умови для розвитку молюсків – перших проміжних господарів трематод, а також залучає рибоїдних птахів, які є остаточними господарями багатьох видів трематод риб. Наступним за кількістю видів трематод риб є Мінгечавірське водосховище, де у риб виявлено 25 видів. Воно є найбільшим серед досліджуваних нами водойм і має великі площі з повільною течією. У рибах Шамкірського водосховища, другого за величиною, відмічено 20 видів, а порівняно невеликому Єнікендському водосховищі, де є швидка течія, зареєстровано 17 видів трематод риб. У кожній водоймі видовий склад трематод риб багатший на тих ділянках, де немає швидкої течії, спостерігається заростання водною рослинністю та присутні рибоїдні птахи. Виявилося, що у водоймах, розташованих близько друг від друга, одні й самі види зустрічаються частіше, ніж у водоймах, розташованих далеко друг від друга. З часів попередніх досліджень, що проводилися різними авторами у
1950-х, 1970-х та 2000-х роках, видовий склад трематод риб у водосховищах, що утворюють каскад на р. Кура значно збагатилася. Серед знайдених трематод 14 видів патогенні для риб та 2 види небезпечні для людини.
Завантаження
Посилання
Attwood, S.W, Fatih, F.A, Upatham, E.S. (2008). DNA-sequence variation among Schistosoma mekongi populations and related taxa; phylogeography and the current distribution of Asian schistosomiasis. PLoS Neglected Tropical Diseases, 2(3), e200. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.000200
Attwood, S.W., Upatham, E.S. (2012). Observations on Neotricula aperta (Gastropoda: Pomatiopsidae) population densities in Thailand and Central Laos: implications for the spread of Mekong schistosomiasis. Parasites & Vectors, 5, 126. https://doi.org/doi:10.1186/1756-3305-5-126
Attwood, S.W., Ibaraki, M., Saitoh, Y., Nihei, N., Janies, D.A. (2015) Comparative phylogenitic studies on Schistosoma japonicum and its snail intermediate host Oncomelania hupensis: origins, dispersal and coevolution. PLoS Neglected Tropical Diseases, 9(7), e0003935. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003935
Attwood, S.W., Liu, L., Huo, G-N. (2019). Population genetic structure and geographical variation in Neotricula aperta (Gastropoda: Pomatiopsidae), the snail intermediate host of Schistosoma mekongi (Digenea: Schistosomatidae). PLoS Neglected Tropical Diseases, 13(1), e0007061. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0007061
Au, M.F.F., Williams, G.A., Hui, J.H. (2023). Status quo and future perspectives of molecular and genomic studies on the genus Biomphalaria—the intermediate snail host of Schistosoma mansoni. Molecular Sciences, 24, 4895. https://doi.org/10.3390/ijms24054895
Brant, S.V., Loker, E.S. (2005). Can specialized pathogens colonize distantly related hosts? Schistosome evolution as a case study. PloS Pathogens, 1(3), e38. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.0010038
Budiono, N.G., Satrija, F., Ridwan, Y., Handharyani, E., Murtini, S. (2019). The contribution of domestic animals to the transmission of schistosomiasis japonica in the Lindu Subdistrict of the Central Sulawesi Province, Indonesia. Veterinary World, 12(10), 1591-1598. https://doi.org/10.14202/vetworld.2019.1591-1598
Budiono, N.G., Murtini, S., Satrija, F., Ridwan, Y., Handharyani, E. (2020) Humoral responses to Schistosoma japonicum soluble egg antigens in domestic animals in Lindu Subdistrict, Central Sulawesi Province, Indonesia. International Journal of One Health, 6(2), 99-108. https://doi.org/10.14202/IJOH.2019.99-108
Davis, G.M. (1992) Evolution of prosobranch snails transmitting Asian Schistosoma; coevolution with Schistosoma: a review. Progress in Clinical Parasitology, 3, 145-204.
Fang, J., Meng, J., Liu, X., Li, Y., Qi, P., Wei, C. (2022) Single-target detection of Oncomelania hupensis based on improved YOLOv5s. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 10, 861079. https://doi.org/10.3389/fbioe.2022.861079
Gordon, C.A., Kurscheid, J., Williams, G.M., Clements, A.C., Li, Y., Zhou, X.N., Utzinger, J., McManus, D.P., Gray, D.J. (2019). Asian schistosomiasis: current status and prospects for control leading to elimination. Tropical Medicine and Infectious Disease, 4, 40. https://doi.org/10.3390/tropicalmed4010040
Inceboz, T. (2022) One health concept against schistosomiasis: an overview. New Horizon for schistosomiasis research, intechopen, London. https://doi.org/10.5772/intechopen.106912
Haggag, A.A., Rabiee, A., Abd Elaziz, K.M., Campbell Jr, C.H., Colley, D.G., Ramzy, R.M. (2019). Thirty-day Daily Comparisons of Kato-Katz and CCA Assays of 45 Egyptian Children in Areas with Very Low Prevalence of Schistosoma mansoni. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 100(3), 578-583. https://doi.orh10.4269/ajtmh.18-0829
Hauswald, A.K., Remais, J.V., Xiao,N., Davis, G.M., Lu, D., Bale, M.J., Wilke, T. (2011). Stirred, not shaken: genetic structure of the intermediate snail host Oncomelania hupensis robertsoni in an historically endemic schistosomiasis area. Parasites & Vectors, 4, 206. https://doi.org10.1186/1756-3305-4-206
Kameda, Y., Kato, M. (2011) Terrestrial invasion of pamatiopsid gastropods in the heavy-snow region of the Japanese archipelago. BMC Evolutionary Biology, 11, 118. https://doi.org/10.1186/1471-2148-11-118
Latif, B., Heo, C.C., Razuin, R., Shamalaa, D.V., Tappe, D. (2013). Autochthhonous human schistosomiasis, Malaysia. Emerging Infectious Diseases, 19(8), 1340-1341. https://doi.org/10.3201/eid1908.121710
Lawton, S.P., Hirai, H., Ironside, J.E., Johnston, D.A., Rollinson, D. (2011). Genomes and geography: genomic insights into the evolution and phylogeography of the genus Schistosoma. Parasites and Vectors, 4, 131. https://doi.org/10.1186/1756-3305-4-131
Leshem, E., Marva, E., Schwartz, E. (2009) Travel-related schistosomiasis acquired in Laos. Emerging Infectious Diseases, 15(11), 1823-1825. https://doi.org/10.3201/eid1511.090611
Liu, L., Huo, G. N., He, H. B., Zhou, B., Attwood, S. W. (2014). A phylogeny for the pomatiopsidae (Gastropoda: Rissooidea): A resource for taxonomic, parasitological, biodiversity studies. BMC Evolutionary Biology, 14, 29. https://doi.org/10.1186/1471-2148-14-29
Maezawa, K., Furushima-Shimogawara, R., Yasukawa, A., Ohta, N., Iwanaga, S. (2018). Real-time observation of pathophysiological processes during murine experimental Schistosoma japonicum infection using high-resolution ultrasound imaging. Tropical Medicine and Health, 46, 1. https://doi.org/10.1186/s41182-017-0082-5
Mouahid, G., Rognon, A., de Carvalho Augusto, R., Driguez, P., Geyer, K., Karinshak, S., Luviano, N., Mann, V., Quack, T., Rawlinson, K., Wendt, G., Grunau, C., Moné, H. (2018). Transplantation of schistosome sporocysts between host snails: A video guide. Wellcome Open Research, 3(3). https://doi.org/10.12688/wellcomeopenres
Nahum, L.A., Mourao, M.M., Oliveira, G. (2012). New frontiers in Schistosoma genomics and transcriptomics. International of Parasitology Research, 2012(849132), 1-11. https://doi.org/10.1155/2012/849132.
Nelwan, M.L. (2019). Schistosomiasis: life cycle, diagnosis, and control. Current Therapeutic Research, 91, 5-9. https://doi.org/10.1016/j.curtheres.2019.06.001
Nelwan, M.L. (2023) Oncomelania lorelindoensis: the intermediate host of Sulawesi’s Schistosoma japonicum. Preprint at https://doi.org/10.2103/rs.3.rs-3471885/v1
Nelwan, M.L. (2022). Indonesia Schistosoma japonicum: Origin, genus Oncomelania, and elimination of the parasite with cluster genes inoculated into female Oncomelania lorelindoensis via CRISPR/Cas9 system. African Journal of Biological Sciences, 4(4), 23-38. https://doi.org/10.33472/AFJBS.4.4.2022.23-38
Neves, B.J, Andrade, C.H., Cravo, P.V. (2015). Natural Products as Leads in Schistosome Drug Discovery. Molecules, 2, 1872-903. https://doi.org/10.3390/molecules20021872
Okamoto, M., Lo, C.T., Tiu, W.U., Qui, D., Hadidjaja, P., Upatham, S., Sugiyama, H., Taguchi, T., Hirai, H., Saitoh, Y., Habe, S., Kawanaka, M., Hirata, M., Agatsuma, T. (2003) Phylogenetic relationships of snails of the genera Oncomelania and Tricula inferred from the mitochondrial 12S rRNA gene. Japanese Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 31(1), 5-10.
Orpin, J.B., Mzungu, I., Usman-Sani, H. (2022). Prevalence of schistosomiasis among primary school pupils in Guma LGA of Benue state. African Journal of Biological Sciences, 4(4), 48-55. https://doi.org/10.3347/AFJBS.4.4.02.48-55
Rothe, C., Zimmer, T., Schunk, M., Wallrauch, C., Helfrich, K., Gültekin, F., Bretzel, G., Allienne, J.-F., Boissier, J. (2021). Developing Epidemicity of Schistosomiasis, Corsica, France. Emerging Infectious Diseases, 27(1),319-321. https://doi.org/10.3201/eid2701.204391
Sady, H., Al-Mekhlafi, H.M., Webster, B.L., Ngui, R., Atroosh, W.M., Al-Delaimy, A.K., Nasr, N.A., Chua, K.H., Lim, Y.A., Surin, J. (2015) New insights into the genetic diversity of Schistosoma mansoni and S. haematobium in Yemen. Parasites & Vectors, 8, 544. https://doi.org/10.1186/s13071-015-1168-8
Sanchez, R.C.O. Tiwari, S., Ferreira, L.C.G., Oliveira, F.M., Lopes, M.D., Passos, M.J.F., Maia, E.H.B., Taranto, A.G., Kato, R., Azevedo, V.A.C., Lopes, D.O. (2021) Immunoinformatics design of multiepitope peptide based vaccines against Schistosoma mansoni using transmembrane proteins a target. Frontiers in Immunology, 12, 021706. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.021706
Smith, E. (2023). BLAST compares & identifies sequences. Berkeley Library, https://guides.lib.berkeley.edu/ncbi/blast
Sudomo, M. (1983). Cross infectivity study of four subspecies of Oncomelania hupensis in four geographical strains of Schistosoma japonicum. Proceedings ITB, 16(2): 41-46.
Sutrisnawati, S., Ramadhan, A., Trianto, M. (2022) Molecular identification of Oncomelania hupensis lindoensis, snail intermediate hosts of Schistosoma japonicum from Central Sulawesi, Indonesia. Biodiversitas, 23(11), 5989-5994. https://doi.org/10.13057/biodiv/d231153
Walker, J. A. (2011). Insight into the functional biology of schistosomes. Parasites & Vector, 4, 203. https://doi.org/10.1186/1756-3305-4-203
Wang, X. Ruan, L., Song, Q., Wang, W., Tong, P., Kuang, D., Lu, C., Li., N., Han, Y., Dai, J., Sun, X.. (2021). First report of Schistosoma sinensium infecting Tupaia belangeri and Tricula sp. LF. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 14(2021), 84-90. https://doi.org/10.1016/j.ijppaw.2021.01.005
Yin, M., Zheng, H. X., Su, J., Feng, Z., McManus, D.P., Zhou, X.N., Jin, L., Hu, W. (2015). Codispersal of the blood fluke Schistosoma japonicum and Homo sapiens in the Neolithic age. Scientific Reports, 5, 18058. https://doi.org/10.1038/srep18058
Young, N.D., Chan, K.G., Korhonen, P.K., Min Chong, T., Ee, R., Mohandas, N., Koehler, A.V., Lim, Y.L., Hofmann, A., Jex, A.R., Qian, B., Chilton, N.B., Gobert, G.N., McManus, D.P., Tan, P., Webster, B.L., Rollinson, D., Gasser, R.B. (2015). Exploring molecular variation in Schistosoma japonicum in China. Scientific Reports, 5, 17345. https://doi.org/10.1038/srep17345
ZooBank, https://zoobank.org/References/d71b8509-ec6e-492b-8e81-8910957a7b6a
Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої її публікації на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License 4.0 International (CC BY 4.0), яка дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи.
