База даних ProtNA-ASA: нова версія, що включає інформацію про електростатичний потенціал малого жолобка ДНК

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.26565/2075-3810-2022-48-02

Ключові слова:

структурна база даних ProtNA-ASA, білково-нуклеїнові комплекси, структура ДНК, білково-нуклеїнове впізнавання

Анотація

Актуальність: В останні десятиліття швидкий розвиток молекулярної біології призвів до створення безпрецедентної кількості біологічних даних, отриманих науковою спільнотою. Тому існує значна потреба у зберіганні, обробці та розумінні великого обсягу даних. На даний час існує велика кількість специфічних баз даних, які охоплюють різні галузі молекулярної біології.

Мета роботи: Стаття присвячена опису оновленої бази даних ProtNA-ASA (http://www.ire.kharkov.ua/ProtNA-ASA/index.php). Основна мета бази даних ProtNA-ASA — забезпечити швидкий і зручний доступ до інформації про ДНК та білково-нуклеїнові комплекси, яка може бути використана для всебічного дослідження механізмів білково-нуклеїнового впізнавання.

Матеріали та методи: База даних ProtNA-ASA містить інформацію про структури з Банку даних нуклеїнових кислот, отриманих методами рентгеноструктурного аналізу та ЯМР: 973 структури білково-нуклеїнових комплексів, 129 структур вільної А- та 403 структури вільної В-ДНК; наступні параметри для кожної структури: конформаційні параметри ДНК, розраховані за допомогою програми 3DNA/CompDNA; площу доступної поверхні ДНК, розраховану за допомогою модифікованого алгоритму Higo і Go; електростатичний потенціал ДНК, розрахований з використанням пакету DelPhi.

Результати: Оновлена база даних ProtNA-ASA включає значення електростатичного потенціалу ДНК, розподіл якого у малому жолобку відіграє важливу роль у непрямому білково-нуклеїновому впізнаванні. Останнє оновлення також дозволяє проводити розширений пошук інформації з використанням PDB/NDB ID; цитування; довжини та послідовності білка і ДНК; типу структури; методу отримання структури та роздільної здатності. Усі запити можна застосовувати в різних комбінаціях з операторами та/або. Це суттєво полегшує використання бази даних і сприяє більш точному відбору структур.

Висновки: Об’єднання структурної інформації та фізичних характеристик з бази даних ProtNA-ASA є важливим при дослідженні непрямого механізму впізнавання, заснованого на здатності подвійної спіралі ДНК до конформаційних перебудов. Детальний аналіз структур білково-нуклеїнових комплексів і механізмів впізнавання необхідний для розуміння метаболізму ДНК в клітині, регуляції транскрипції, розробки терапевтичних препаратів.

Завантажити

Дані для завантаження поки недоступні.

Посилання

Seeman NC, Rosenberg JM, Rich A. Sequence specific recognition of double helical nucleic acids by proteins. Proc Natl Acad Sci USA. 1976;73:804–8. https://doi.org/10.1073/pnas.73.3.804

Rhodes D, Schwabe JW, Chapman L, Fairall L. Towards an understanding of protein-DNA recognition. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 1996;351:501–9. https://doi.org/10.1098/rstb.1996.0048

Matthews BW. No code for recognition. Nature. 1988;335:294-295. https://doi.org/10.1038/335294a0

Wetzel JL, Zhang K, Singh M. Learning probabilistic protein-DNA recognition codes from DNA-binding specificities using structural mappings. 2022. Preprint bioRxiv. https://doi.org/10.1101/2022.01.31.477772

Burks C. Molecular Biology Database List. Nucleic Acids Res. 1999;27:1–9. https://doi.org/10.1093/nar/27.1.1

Berman HM, Olson WK, Beveridge DL, Gelbin A, Demeny T, Hsieh SH, et al. The nucleic acid database: A comprehensive relational database of three-dimensional structures of nucleic acids. Biophys J. 1992;63(3):751–9. https://doi.org/10.1016/S0006-3495(92)81649-1

Bairoch A, Boeckmann B. The SWISS-PROT protein sequence data bank, recent developments. Nucleic Acids Res. 1993;21(13):3093–6. https://doi.org/10.1093/nar/21.13.3093

Berman HM, Battistuz T, Bhat TN, Bluhm WF, Bourne PE, Burkhardt K, et al. The Protein Data Bank. Acta Cryst Sec D Biol Cryst. 2002;58(1):899–907. https://doi.org/10.1107/S0907444902003451

Kinjo AR, Bekker GJ, Suzuki H, Tsuchiya Y, Kawabata T, Ikegawa Y, et al. Protein Data Bank Japan (PDBj): updated user interfaces, resource description framework, analysis tools for large structures. Nucleic Acids Res. 2017;45(D1):D282–D288. https://doi.org/10.1093/nar/gkw962

Svozil D, Kalina J, Omelka M, Schneider B. DNA conformations and their sequence preferences. Nucleic Acids Res. 2008;36:3690–706. https://doi.org/10.1093/nar/gkn260

Rohs R, West SM, Sosinsky A, Liu P, Mann RS, Honig B. The role of DNA shape in protein–DNA recognition. Nature. 2009;461:1248–53. https://doi.org/10.1038/nature08473

Rohs R, West SM, Liu P, Honig B. Nuance in the double-helix and its role in protein-DNA recognition. Curr Opin Struct Biol. 2009;19:171–7. https://doi.org/10.1016/j.sbi.2009.03.002

Abe N, Dror I, Yang L, Slattery M, Zhou T, Bussemaker HJ, et al. Deconvolving the recognition of DNA shape from sequence. Cell. 2015;161(2):307–18. https://doi.org/10.1016/j.cell.2015.02.008

Web 3DNA 2.0 for the analysis, visualization, and modeling of 3D nucleic acid structures [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: http://web.x3dna.org/

Curves+ [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: http://gbio-pbil.ibcp.fr/Curves_plus

3D-footprint is a database of DNA-binding protein structures [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: http://floresta.eead.csic.es/3dfootprint

DP-Bind: a web server for sequence-based prediction of DNA-binding residues in DNA-binding proteins [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: http://lcg.rit.albany.edu/dp-bind/

ProNIT database provides experimentally determined thermodynamic interaction data between proteins and nucleic acids [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: http://dna00.bio.kyutech.ac.jp/pronit/

Human Protein-DNA Interactome (hPDI) [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: http://bioinfo.wilmer.jhu.edu/PDI/

PDIdb Protein-DNA Interface Database [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: http://melolab.org/pdidb/web/content/home

DNAproDB [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: https://dnaprodb.usc.edu/

ProDFace: Server for the Analysis of Protein-DNA Interface [Internet]. [cited 2022 Nov 7]. Available from: http://structbioinfo.iitj.ac.in/resources/bioinfo/pd_interface/

Tkachenko MYu, Boryskina OP, Shestopalova AV, Tolstorukov MY. ProtNA-ASA: Protein-Nucleic Acid Structural Database with Information on Accessible Surface Area. Int J Quant Chem. 2010;110:230–2. https://doi.org/10.1002/qua.22067

Zhitnikova MY, Shestopalova AV. DNA minor groove electrostatic potential: influence of sequence-specific transitions of the torsion angle gamma and deoxyribose conformations. J Biomol Struct Dyn. 2017;35(15):3384–97. https://doi.org/10.1080/07391102.2016.1255259

Gorin AA, Zhurkin VB, Olson WK. B-DNA twisting correlates with base-pair morphology. J Mol Biol. 1995;247(1):34–48. https://doi.org/10.1006/jmbi.1994.0120

Lu XJ, Olson WK. 3DNA: a software package for the analysis, rebuilding and visualization of three-dimensional nucleic acid structures. Nucleic Acids Res. 2003;31(17):5108–21. https://doi.org/10.1093/nar/gkg680

Higo J, Gō N. Algorithm for rapid calculation of excluded volume of large molecules. J Comput Chem 1989;10:376–9. https://doi.org/10.1002/jcc.540100311

Zhitnikova MYu, Boryskina OP, Shestopalova AV. Sequence-specific transitions of the torsion angle gamma change the polar-hydrophobic profile of the DNA grooves: implication for indirect protein-DNA recognition. J Biomol Struct Dyn. 2014;32(10):1670–85. https://doi.org/10.1080/07391102.2013.830579

Li L, Li C, Sarkar S, Zhang J, Witham S, Zhang Z, et al. DelPhi: a comprehensive suite for DelPhi software and associated resources. BMC Biophys. 2012;5:9. https://doi.org/10.1186/2046-1682-5-9

Rohs R, Jin X, West SM, Joshi R, Honig B, Mann RS. Origins of specificity in protein-DNA recognition. Annu Rev Biochem. 2010;79:233–69. https://doi.org/10.1146/annurev-biochem-060408-091030

West SM, Rohs R, Mann RS, Honig B. Electrostatic interactions between arginines and the minor groove in the nucleosome. J Biomol Struct Dyn. 2010;27(6):861–6. https://doi.org/10.1080/07391102.2010.10508587

Chen X, Tsai MY, Wolynes PG. The Role of Charge Density Coupled DNA Bending in Transcription Factor Sequence Binding Specificity: A Generic Mechanism for Indirect Readout. J Am Chem Soc. 2022;144(4):1835–45. https://doi.org/10.1021/jacs.1c11911

Tullius T. Structural biology: DNA binding shapes up. Nature. 2009; 461:1225-1226. https://doi.org/10.1038/4611225a

Chiu TP, Rao S, Mann RS, Honig B, Rohs R. Genome-wide prediction of minor-groove electrostatic potential enables biophysical modeling of protein–DNA binding. Nucleic Acids Res. 2017;45(21):12565–76. https://doi.org/10.1093/nar/gkx915

Si J, Zhao, R, Wu R. An Overview of the Prediction of Protein DNA-Binding Sites. Int J Mol Sci. 2015;16:5194–215. https://doi.org/10.3390/ijms16035194

Zhitnikova MYu, Shestopalova AV DNA-protein complexation: contact profiles in DNA grooves. Biophys Bull. 2017;38(2):54–65. https://doi.org/10.26565/2075-3810-2017-38

Завантаження

Опубліковано

2023-01-30

Номер

Розділ

Молекулярна біофізика